2016年12月25日
本方案描述了一种使用手术刀加载荧光染料转移的技术,用于测量通过间隙连接通道的细胞间通讯。间隙连接介导的细胞间通讯是一种重要的细胞过程,对维持组织稳态至关重要,而此类细胞信号传导的中断会对健康产生不利影响。
总体目标是提供一种简单的检测方法,用于测量哺乳动物细胞群体中的间隙连接细胞间通讯,以满足广泛的体外药理学和毒理学研究需求。该方法有助于回答毒理学领域的关键问题,例如某种化合物是否通过干扰间隙连接细胞间通讯而影响组织的发育或稳态维持。该技术的主要优势在于,能够对大量细胞在接触毒物或毒素后,其间隙连接功能的变化进行简便且快速的评估。
演示该实验步骤的是我实验室的本科研究助理 Ajna Uzuni。实验开始时,将 3 × 10⁵ 个 WB-F344 大鼠肝上皮细胞接种至含有 Eagle 改良培养基和 5% 胎牛血清的 35 毫米直径培养皿中,每组三次重复。将细胞在培养箱中培养至 100% 汇合,随后继续进行细胞的实验处理。
为了继续进行剂量-反应实验,向三块细胞培养板(每块含2毫升培养基)中分别加入10微升和20微升先前配制的、溶于100%乙腈中的2毫摩尔母液,以及4微升、6微升和8微升溶于100%乙腈中的20毫摩尔菲(phenanthrene)母液,每种添加体积对应三块细胞培养板。接着,作为溶剂对照,向另外三块含2毫升培养基的细胞培养板中分别加入4微升、6微升、8微升、10微升和20微升的100%乙腈溶液,每种添加体积对应三块细胞培养板。加入乙腈后,将培养板置于培养箱中孵育。
为进行时间响应实验,将7微升浓度为20毫摩尔/升的菲(溶于100%乙腈)加入到三块细胞培养板中,每块培养板含2毫升生长培养基,对应每个时间点。然后,将7微升100%乙腈加入到另外三块细胞培养板中,每块培养板同样含2毫升生长培养基,作为溶剂对照。将各培养板在指定的时间点分别孵育。
轻轻倾倒弃去培养基。用三毫升磷酸盐缓冲液(PBS)冲洗细胞,每次冲洗之间倾去或吸去液体。将一毫升浓度为一毫克每毫升的荧光黄染料(溶于PBS中)移液至每块细胞培养板中。
用拇指和食指夹住手术刀,将染料预加载到细胞中。将手术刀垂直置于培养板边缘外5毫米处,然后利用重力使手术刀从垂直位置轻轻滚动至15度角。在培养板的三个不同区域分别滚动刀片,穿过细胞群体。
接下来,在室温下用 LY 溶液孵育细胞 3 分钟。倾去或吸去 LY 溶液,并冲洗细胞以去除所有细胞外染料,消除细胞外背景荧光。然后,加入 0.5 毫升 4% 磷酸盐缓冲甲醛溶液以固定细胞。
使用倒置荧光显微镜在200倍放大倍数下观察固定的细胞。调整所有培养板的方向,使凹槽线与水平视野平行。一系列SL-DT图像由经不同浓度菲处理的WB-F344大鼠肝上皮细胞生成。
随着菲剂量的增加,荧光染料 Lucifer Yellow 的迁移减少,表明间隙连接细胞间通讯(GJIC)受到的毒性抑制作用逐渐增强。从 SL-DT 图像获得的对照组分数(FOC 值)经平均、统计分析后作图。按照此流程,还可进行其他方法,如单个转导蛋白的 Western 印迹,以回答更多科学问题。
例如,这些化合物是否正在激活细胞穿孔的有丝分裂原事件?
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本方案描述了一种刀片加载-荧光染料转移技术,用于测量通过间隙连接通道的细胞间通讯。该方法提供了一种简单的检测手段,用于评估哺乳动物细胞中的间隙连接细胞间通讯,这对于理解组织稳态至关重要。
间隙连接细胞间通讯(GJIC)可作为功能性生物标志物,用于评估毒性物质对组织稳态的破坏作用,并评价天然产物的保护效果。刀片划痕-荧光染料转移(SL-DT)技术能够实现对GJIC抑制的快速、群体水平评估,有助于在早期发现阶段进行机制性风险排除。该检测方法可通过化合物对维持器官功能至关重要的细胞通讯通路的影响,提供可靠的预测依据,从而优先筛选候选化合物。
SL-DT 检测作为一种发现阶段的工具,用于提供机制性见解,在先导化合物优化之前用于筛选具有高组织破坏风险的化合物。