2018年7月1日
本文介绍一种可灵活应用的全生物体高内涵筛选工具,可用于研究宿主与病原体之间的相互作用,并适用于药物发现。
该方法可用于解答宿主与病原体相互作用及药物发现领域的问题,例如不同毒力因子的重要性,以及小分子化合物在抑制发病过程中的作用能力。该技术的主要优势在于其以液体形式进行,且所需体积较小。首先,在生物安全二级(BSL 2)生物安全柜内操作,将铜绿假单胞菌(P.aeruginosa)从冻存菌种划线接种至LB琼脂平板上。
将培养板在37摄氏度孵育16至24小时,然后将培养板在4摄氏度保存,最多可保存一周。在准备检测培养板前两天,从培养板上挑取单菌落,接种于3至5毫升无菌LB液体培养基中。在37摄氏度孵育培养物12至16小时。
根据文本方案配制慢杀灭(SK)培养基后,取350毫升来自新鲜过夜LB培养物的铜绿假单胞菌(P. aeruginosa),接种至每个10厘米的SK平板。使用无菌涂布棒将细菌均匀涂布,并将平板置于生物安全柜中晾干。
然后,将培养板在37摄氏度下孵育24小时。为了在24孔深孔板的单个孔中并行测试多种RNAi细菌菌株,从先前制备的含RNAi的细菌克隆中各挑取单个菌落,接种至4毫升添加了羧苄青霉素的LB培养基中。将培养板放入专为多孔板优化的摇床培养箱中,在37摄氏度、950 rpm条件下振荡培养16小时,随后在2,000 g离心5分钟收集细菌。通过将培养板倒置并用力振荡,弃去上清液。
用 100 微升 S 基础培养基重悬 RNAi 细菌。将重悬的细菌用移液器加入含有 IPTG 和羧苄青霉素的多孔 NGM 培养板的适当孔中,并让培养板干燥。根据文本方案制备 L1 期线虫后,通过移液将约 5,000 条线虫接种到每个 10 厘米的培养板上,每个培养板预先接种 RNAi 细菌或 OP50 超级食物,以准备基础实验。
进行RNAi筛选实验时,将约300条线虫移至接种了RNAi细菌的24孔板中,每孔加一条。若所用线虫品系在温度敏感条件下不育,则先在15摄氏度培养约16小时,随后转移至25摄氏度继续培养44小时,以完成发育并抑制胚胎形成。进行液体致死实验时,使用细胞刮从SK平板上刮下铜绿假单胞菌(P. aeruginosa),并将其重悬于约5毫升S. Basal溶液中。
使用分光光度计测定细菌悬液在600 nm处的光密度(OD 600)。在S.Basal培养基中制备24毫升铜绿假单胞菌(P.Aeruginosa)稀释菌液,使其OD 600为0.9,然后加入21毫升液态SK培养基,使用多通道移液器将45微升菌液与培养基混合物转移至384孔板的每个孔中。将线虫从原培养体系中冲洗至50毫升锥形管中,并在重力作用下使其自然沉降。
吸去上清液至5毫升,然后总共使用50毫升S.Basal重悬线虫,并重复洗涤两次。根据文本方案,使用线虫分选仪将约22条线虫分选至384孔板的每个孔中,然后用透气膜密封培养板,在25°C下孵育24至48小时。在预定时间,使用微孔板洗涤仪和S.Basal对384孔板总共洗涤5次。
最容易犯的错误之一是在线虫完全沉降之前就吸取384孔板中的液体。准确判断线虫是否已完全沉降需要一定的经验。在最后一次洗涤后,将上清液吸除至剩余20 µL。
然后,每孔加入 50 微升 98 微摩尔的核酸染料,使终浓度为 0.7 微摩尔。将培养板在室温下孵育 12 至 16 小时。在完成所需的孵育时间后,使用酶标洗板机至少洗涤培养板三次。
使用分光光度计或自动化显微镜进行数据采集,以获取透射光和荧光图像。在含有300条线虫的24孔板的每个孔中加入1毫升S基础培养基。通过轻轻振荡培养板使线虫混匀,然后将线虫转移至一个空的、无菌的24深孔板中。
让线虫在重力作用下自然沉降,约五分钟。吸除上清液,每孔保留约一毫升。然后向每孔加入7毫升S基础培养液。重复洗涤两次,最后一次洗涤后,吸除上清液,仅保留约400微升。
为了避免细菌饥饿,将细菌移液至384孔板中,然后使用蠕虫分选仪的重取样功能,将22条蠕虫分选至每个384孔板的孔中。最后,在分选完成后,加入小分子或其他实验特异性材料。如本图所示,当按照本视频所述步骤操作时,仅在存在铜绿假单胞菌(P.aeruginosa)的情况下,才会观察到秀丽隐杆线虫(C.elegans)的时间依赖性死亡现象。
相比之下,若缺乏关键的细菌营养补充物,则几乎不会观察到杀灭作用。如图所示,铜绿假单胞菌(P. aeruginosa)在37摄氏度孵育后转至25摄氏度孵育的两步法,对于传统的慢杀灭实验至关重要,最初在液体杀灭实验中被采用,但在本实验中并非必需。该方案可耐受较宽范围的初始细菌浓度,最低可至OD600等于0.025,仍能表现出时间和浓度依赖性的杀灭效果,尽管杀灭时间会有所偏移。
此外,通常仅需四个孔即可获得具有统计学意义的数据。当信噪比较高时,处理方法的实用性如本例所示:分析过程简单,且区分阳性与阴性条件轻而易举。在这些情况下,即使微弱的信号也能被轻易识别。
一旦掌握,该技术每块384孔板的操作时间约为60至75分钟(不包括分选时间)。在进行该操作时,必须注意将所有组分加入培养基中,否则毒力会受到影响。该检测方法简化了在宿主-病原体研究中将完整生物体表型筛选应用于药物发现的过程。
观看本视频后,您应能充分掌握如何开展基于液体的秀丽隐杆线虫(C. elegans)病原性测定实验。该实验流程可通过替换其他病原体(例如用粪肠球菌 E. Faecalis 替代铜绿假单胞菌 P. Aeruginosa)进行调整,从而有助于探索其他细菌感染的治疗方法。请务必注意,操作铜绿假单胞菌(P. Aeruginosa)或粪肠球菌(E. Faecalis)等感染性细菌可能存在危险。
进行此操作时,应始终采取适当的预防措施,例如接受正规培训、穿戴合适的个人防护装备以及采用正确的操作技术。
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本文介绍了一种用于研究宿主-病原体相互作用并辅助药物发现的高内涵筛选工具的实验方案。该方法强调在液体体系中使用小体积样品,因而可适用于多种实验。
这种基于液体的秀丽隐杆线虫病原系统能够在液体体系中进行高通量表型筛选,通过在早期发现阶段剔除具有毒性或生物不可利用性的化合物,减少假阳性结果。该检测方法支持对宿主-病原体相互作用及毒力因子进行快速分析,从而加速抗菌药物研发中的靶点验证和先导化合物的识别。该系统与RNAi筛选及小分子测试兼容,为治疗假设的去风险化提供了一个可扩展、可重复的平台,可在进行昂贵的生化纯化或动物模型研究之前完成验证。
该检测适用于早期发现阶段的工作流程,支持宿主-病原体相互作用中的假设验证,并能够从靶点鉴定推进到表型先导化合物筛选。