2018年11月8日
本文介绍了一种制备小型动物脑组织以进行显微CT成像的简便方法,该方法可在全脑背景下高精度地量化损伤并定位电极。
该方法通过提供一种更简单、更不易出错且更具定量性的手段来验证脑损伤并定位电极位置,有助于解答神经科学领域中的关键问题。该技术的主要优势在于,无需对脑组织进行切片,即可实现对全脑范围内损伤区域和电极植入位点的验证。最终获得的是脑组织的数字化三维体积图像,并可同时对多个脑样本进行平行处理。
尽管本方法将以大鼠为例进行演示,但也可应用于其他生物体,如小鼠和斑胸雀。通常,初次接触此方法的实验者可能会遇到困难,因为某些步骤需要特别注意以确保最佳结果。首先,将取出的大脑置于50毫升锥形管内的灌注液中。
将样品在 4°C 条件下轻轻振荡保存两至三天。确保锇酸用水稀释,而非缓冲液。因为水可起到温和去污剂的作用,使锇酸深入渗透组织。
用双蒸水配制 50 毫升 2% 四氧化锇溶液。然后将脑组织放入一个新的 50 毫升锥形管中,并加入四氧化锇溶液。盖紧管盖,并用石蜡膜密封以防止泄漏。
将密封的试管置于4°C条件下,轻轻振荡保存两周。确保试管水平放置。脑组织非常致密,物质通过扩散移动的距离较长。
将试管水平放置可使四氧化锇更深入地渗透到组织中。样品在孵育两周后,用双蒸水洗涤五次,以去除样品中所有未结合的四氧化锇。接着,在4°C条件下用双蒸水洗涤样品30分钟。
用四种浓度的乙醇替代双蒸水以对样品进行脱水。为开始树脂渗透过程,将样品依次通过三种丙酮溶液和三种丙酮-树脂混合液,然后将样品浸入100%树脂中,在室温下继续渗透过程。之后,将样品转移至一次性模具中。
在室温下用新鲜的100%树脂浸泡样品4小时。在45摄氏度下将样品置于真空烘箱中脱气15分钟。然后在60摄氏度下将样品放入烘箱中固化48小时。
最后,当样品完成固化后,撕下一次性模具,并用显微CT仪器对样品进行扫描。在传统的切片方法中,脑组织的取向必须预先确定。而使用这种显微CT方法,可以对样品脑组织的数字三维体积进行操作,并在任意方向上进行虚拟切片。
对制备好的大鼠脑组织进行扫描电镜观察,结果证实该组织在用于显微CT成像时未受到显著损伤。此外,按照本方案对斑胸草雀脑组织进行制备和扫描,以验证该方法在其他小型动物脑组织中的适用性。该技术可用于检测脑表面的病灶,以及位于脑深部的病灶。
该技术还可用于原位单根四极电极、电解损伤、电极轨迹、原位四极电极阵列以及原位硅探针的定位。在进行该操作时,需注意确保脑组织有足够的孵育时间,并保持充分的振荡。在完成该操作后,可进一步采用光遗传学和双光子成像等其他方法,以探究不同脑区在各种行为中所起作用的相关问题。
该技术可使神经科学领域的研究人员能够更好地探索大鼠、小鼠、鸣禽及其他小型动物中大脑与行为之间的结构-功能关系。请注意,使用锇时可能具有极高危险性,因此在进行该操作时,必须采取预防措施,例如佩戴手套并在真空罩内操作。
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本文介绍了一种用于制备小型动物(特别是大鼠)脑组织以进行显微CT成像的方法。该技术旨在无需切片的情况下量化病灶并精确定位电极,从而生成脑组织的完整三维数字图像。
精确的病灶表征和电极定位对于验证神经科学驱动药物发现中的机制假说至关重要。该基于显微CT的工作流程可实现脑部干预的高分辨率、定量映射,减少人工误差,并支持可重复的跨研究比较。该方法在靶点验证和临床前模型转折点处提高了预测可信度,直接影响转化连续性及研发管线决策。
这种微型CT方法在发现生物学与临床前模型验证的交界处发挥作用,将解剖学验证与功能及行为读数相结合。