2021年7月7日
显微注射技术对于将外源基因导入蚊子基因组至关重要。本方案介绍了James实验室用于向Anopheles gambiae胚胎显微注射DNA构建体以产生转基因蚊子的方法。
本方案具有重要意义,因为它提供了一种针对冈比亚按蚊(Anopheles gambiae)的特异性显微注射方法,而该物种历来难以通过常规基因工程技术进行转化。该技术的主要优势在于能够稳定地创制转基因冈比亚按蚊。该技术的应用前景涵盖疟疾根除的新策略,通过创制适用于种群压制或改造野生型冈比亚按蚊种群的蚊子,推动相关研究的发展。
该方法可轻松适用于不同的蚊虫种类。我们的显微注射技术需要耐心和练习,存在一定的学习曲线。
首先,使用吸虫器将20至30只雌蚊放入一个透明的50毫升锥形管中。确保该管两端均被切开,一端覆盖乳胶牙科膜,另一端覆盖尼龙网和滤纸,蚊子将在该端产卵。将装有蚊子的管子置于盛有双蒸水的小型培养皿中,然后将管子和培养皿放入28°C的培养箱中孵育45分钟。
从培养箱中取出试管,将其插入一个空的笼子中。轻轻敲击试管,使蚊子飞出。待所有蚊子都飞出后,将试管从笼子中移除。
当管内无蚊子时,拧开底部环,取下尼龙网,并用镊子小心地将带有卵的滤纸从管中取出。将附有卵的滤纸放入一个塑料培养皿中,培养皿内预先放置一层用水润湿的滤纸。取一张膜置于干净的载玻片上,用干净的镊子将一小片滤纸覆盖在膜上,保留约一毫米的膜过滤区域不被覆盖。
用去离子水润湿滤纸,然后用刷子轻轻将30至50个胚胎转移到膜的边缘,并沿膜垂直排列卵子。将卵子朝向同一方向摆放,以便在显微注射显微镜下观察时,卵子的后端朝下,并与注射针成15度角。沿膜的整个边缘排满卵子。
使用微载样头吸取两微升(2 µL)DNA 混合物以填充针头。将针头插入针座,并连接自动压力泵管路。调整针头方向,使其与载玻片平面成 15 度角。
通过轻轻触碰第一个卵子来打开针尖,然后将针尖插入卵子后极约10微米处。成功的注射会导致卵子内部细胞质出现轻微移动。使用显微镜同轴载物台控制装置移动至下一个卵子,继续注射。
为确保针尖保持通畅且未堵塞,在进入另一个胚胎前按下“注射”按钮,并观察针尖开口处形成的小液滴。如果针尖发生堵塞,请按下“清除”按钮以疏通针尖,并重复进行液滴观察测试。若针尖开口略有变大,可根据需要调整压力,以确保液滴大小保持较小。
每根针注射约40至50枚卵。注射完成后,将卵冲洗至一个内衬滤纸并装有50毫升去离子水的玻璃容器中。采用此方案,已将一个自主基因驱动系统插入到冈比亚按蚊G3实验室品系的生殖系中。
该系统旨在靶向该物种第三条染色体上的核心直系同源基因(Agcd)。图示为质粒pCO37,其包含受nanos基因直系同源物调控元件控制的化脓性链球菌(Streptococcus pyogenes)Cas9内切酶。
此外,该系统包含一个由U6基因启动子调控的引导RNA,以及一个表达青色荧光蛋白的3XP3 CFP显性标记盒。分子学方法证实了约10千碱基对DNA的准确插入,该序列被命名为AgNosCd-1。后续的深入分析表明,AgNosCd-1在基因驱动中效率很高,产生的抗性等位基因极少,并且由于基因驱动系统的整合与表达未引起显著的遗传负荷。
携带纯合基因驱动的蚊子为功能缺失型突变体,其幼虫、蛹和新羽化的成虫均表现为红眼表型。在实施本方案时,将温度维持在88至关重要,以确保良好的孵化率,获得浅灰色虫卵,并避免出现白色虫卵。
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本方案概述了一种将外源基因导入冈比亚按蚊胚胎的显微注射技术,有助于获得转基因蚊子。该方法解决了利用传统基因工程手段转化该物种长期存在的技术难题。
对Anopheles gambiae胚胎进行显微注射可实现稳定的种系转化,从而解决媒介控制研究中长期存在的瓶颈问题。该技术通过在关键疾病媒介中实现可遗传的基因修饰,推动了用于消除疟疾的基因驱动系统的开发。可靠的胚胎注射可提高对靶点验证及阻断传播策略的临床前建模结果的预测可信度。
显微注射方法通过实现靶点验证、品系构建以及对疟疾防控相关基因干预的功能评估,契合了从发现到临床前研究的连续过程。