2021年6月23日
我们介绍一种使用标准实验室设备快速且经济高效地制备重组型PURE无细胞转录-翻译系统的方法。
这种重组无细胞蛋白表达系统(通常称为PURE系统)的实验方案利用细胞培养和细胞纯化来简化所需的蛋白纯化步骤,显著减少了时间和劳动投入。OnePot方法被证明不仅具有成本效益,而且时间效率高。
它将制备时间从数周缩短至三个工作日,使全球更多实验室能够使用PURE无细胞平台,并有助于推广这一功能强大的合成无细胞生物学平台。在开始之前,请确保所有菌株均能良好地过表达其相应的蛋白质。
首先,按照文稿中所述方法,使用 2 毫升 Sepharose 树脂制备 OnePot 蛋白纯化柱,然后用硫酸镍对层析柱进行上样。通过将 20 毫升 LB 培养基与 20 微升氨苄青霉素混合,制备起始培养物。将 300 微升培养基加入无菌 96 深孔板的 35 个孔中。
除延长因子热不稳定蛋白(EFTU)外,分别向每个培养物中接种相应的菌株,并用透气膜密封培养板。对于EFTU培养物,取3毫升含氨苄青霉素的LB培养基加入14毫升带卡扣盖的培养管中,并接种EFTU。每3毫升EFTU培养物足以用于一次OnePot表达培养。
在37摄氏度、260转/分钟振荡条件下过夜培养。第二天,将500毫升LB培养基和500微升氨苄青霉素加入无菌挡板烧瓶中。用1,675微升EFTU培养物以及深孔板中每种培养物各55微升,接种OnePot PURE培养体系。
将培养物在37摄氏度、260转/分钟振荡条件下孵育2小时,或直至培养物的光密度达到0.2至0.3。加入500微升0.1毫摩尔的IPTG诱导培养物,并继续培养额外3小时。在4摄氏度、3,220 × g条件下离心10分钟收集细胞,并将细胞沉淀于-80摄氏度保存,直至后续使用。
第三天,测定纯化所需的缓冲液体积,并按照文中说明向所有缓冲液中加入TCEP。将未添加TCEP的剩余缓冲液于4°C保存,用于后续纯化。用30毫升缓冲液A平衡已上样柱子。当25毫升缓冲液A流经柱子后,关闭柱子底部。
解冻细胞,用移液管将细胞沉淀重悬于7.5毫升缓冲液A中。使用130瓦的探头进行细胞裂解。若超声成功,溶液会变深。确保将细胞保持在冰上,并将探头插入足够深度,但不要接触管壁。
在 4 摄氏度下以 21,130 × g 离心 20 分钟,去除细胞碎片,并将裂解液置于冰上保存。将上清液加入已平衡的层析柱中。从顶部关闭层析柱,并确保无泄漏。
将柱子置于4°C下,使用试管旋转仪旋转孵育三小时。从柱子中洗脱未结合组分,并用25毫升缓冲液A洗涤。用25毫升25毫摩尔咪唑缓冲液洗涤柱子。用5毫升450毫摩尔咪唑缓冲液洗脱蛋白质,并始终将洗脱的蛋白质置于冰上保存。
用25毫升HT缓冲液稀释洗脱液,并将混合物置于冰上。取15毫升加入15毫升离心过滤管中,浓缩至1.5毫升体积。将剩余的15毫升加入含有浓缩液的滤管中,再次浓缩至1.5毫升。
向浓缩样品中加入10毫升HT缓冲液,浓缩至1毫升。回收浓缩样品,加入等体积的储存缓冲液B,于-80摄氏度保存,直至后续使用。在缓冲液置换过程中,按照文中所述方法恢复层析柱。
第四天,使用 Bradford 法测定蛋白浓度。使用 0.5 毫升截留分子量为 3 千道尔顿的离心过滤器将样品浓缩至 20 毫克/毫升。通过 SDS-PAGE 验证 OnePot PURE 蛋白的组成。
取2.5微升样品,加入7.5微升水和10微升2× Laemmli缓冲液混合液进行稀释,然后分别上样5微升和2.5微升至凝胶中。按照文中所述条件运行SDS-PAGE。在电子表格中对应的黄色单元格内填写DNA的浓度和长度,反应中使用DNA的浓度范围为2至10纳摩尔。
填写所需的总体反应体积(单位:微升)。从冷冻柜中取出所需的试剂,并在冰上解冻。然后,将计算好的水量、DNA 和能量溶液加入 PCR 管的一侧或 384 孔板中某一孔的角落处。
用移液器将计算好体积的蛋白质和核糖体溶液加入PCR管的另一侧,或384孔板的对角孔中。离心约30秒,使反应组分混合。为防止在酶标仪实验过程中发生蒸发,加入35 µL液体石蜡,并用透明封板膜密封。
在 37 摄氏度下孵育至少三小时。使用酶标仪检测时,每两分钟在所需波长下测定一次荧光强度。此处展示了后续用于 OnePot 蛋白制备的所有单个菌株中成功的过表达结果。
通过SDS-PAGE分析了最终OnePot PURE蛋白溶液的整体组成。可以明显观察到,与其他蛋白相比,EFTU的浓度更高,这与预期一致。通过监测eGFP荧光随时间的变化,分析了OnePot蛋白溶液与His标签化或非标签化核糖体结合后的蛋白合成产量。
通过SDS-PAGE凝胶分析了使用绿色列表tRNA体外标记系统或Kumasi染色法标记的三种不同蛋白质的表达水平。对于一个具有功能的PURE系统而言,所有菌株均能良好表达其相应蛋白质至关重要。该技术促进了PURE系统在生物系统工程中的应用,从而推动新型基因网络、分子诊断、治疗手段及教育套件的开发。
本文介绍了一种使用标准实验室设备快速且经济高效地制备重组型PURE无细胞转录-翻译(TX-TL)系统的方法。OnePot方法显著缩短了制备时间,使该平台更易于被全球各地的实验室所采用。
OnePot PURE 无细胞系统将制备时间从数周缩短至三天,降低了合成生物学工作流程的成本和人力门槛。这使得在早期发现阶段,更多研究人员能够获得一种成分明确、可调控的底盘系统,用于靶点验证和检测方法开发。通过简化重组蛋白的生产过程,该系统支持在临床前研究中快速构建基因网络原型,并实现机制层面的风险评估。
OnePot PURE 方法适用于从靶点鉴定到先导化合物优化的整个发现流程,支持将基因设计快速转化为功能性蛋白质。