2021年8月5日
在此,我们介绍一种从血小板裂解物(PL)中分离细胞外囊泡(EVs)并将其用于钛(Ti)种植体表面涂层的方法。我们描述了液滴涂覆法、EVs从表面的释放曲线,以及 体外 EV包被钛表面的生物相容性
细胞外囊泡与生物材料的结合是再生医学研究中一种理想的方法。因此,本研究报道了利用细胞外囊泡对钛材料进行功能化修饰,作为一种适用于骨科及骨组织再生的实用工具。与聚合物包埋或生物化学结合等其他策略相比,滴涂法功能化修饰是一种简便且低成本的方法。
开始钛表面功能化处理,先将钛片置于玻璃烧杯中,用去离子水清洗。随后弃去水,再用70%乙醇清洗钛片。倾去乙醇后,将清洗过的植入物在去离子水中于50°C超声处理5分钟。
弃去水后,将钛种植体在 40% 氢氧化钠溶液中于 50 °C 条件下振荡孵育 10 分钟,然后按照所示方法将种植体在去离子水中进行超声处理。接着,用去离子水对种植体至少清洗五次,直至 pH 指示剂显示 pH 值为中性。
重复之前所述的超声和孵育过程,将氢氧化钠替换为50%硝酸。在将植入物储存于70%乙醇溶液之前,先用去离子水进行洗涤和超声处理。将钛植入物置于30%硝酸溶液中,在室温下轻轻振荡孵育30分钟。
孵育后,用去离子水至少洗涤五次,直至pH指示剂显示pH值为中性。然后将钛种植体在去离子水中于室温下孵育过夜。次日,在40°C下真空干燥种植体10分钟。
在细胞培养柜中操作,将钛种植体放入96孔板,机械面朝上。通过解冻细胞外囊泡(EVs)溶液并涡旋振荡3秒,进行溶液混匀。混匀后,根据纳米颗粒追踪分析确定的浓度,向钛表面滴加40微升EVs溶液,使每个种植体固定最多4 × 10^11个EVs。
接下来,将培养板置于37°C的真空条件下约两小时,或直至液滴完全干燥。根据钛种植体的数量以及真空腔室中的水分含量调整干燥时间。通过纳米颗粒追踪分析法测定钛片释放的细胞外囊泡(EVs)数量。
第2天,释放的EVs数量约为10^9,随后在第6、10和14天持续释放。通过乳酸脱氢酶(LDH)释放实验,在细胞接种到植入物后48小时评估了钛EVs的体外细胞相容性。钛EVs的LDH释放量低于可接受的最大细胞毒性值。
而钛对照组则显示出较高的乳酸脱氢酶(LDH)活性水平。最关键的步骤是涂层植入物的真空干燥。必须确保所有水分完全蒸发,以实现最佳的物理吸附。
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本研究介绍了一种从血小板裂解物中分离细胞外囊泡(EVs)并将其应用于钛种植体表面涂层的方法。重点在于采用滴涂法进行表面功能化、EVs的释放特性以及涂层表面的生物相容性。
该方法可实现钛植入物与血小板来源的细胞外囊泡的功能化结合,成本低且可规模化,旨在增强骨科应用中的成骨潜能。通过细胞外囊泡介导的信号传导提高生物材料的生物活性,该方法可支持骨再生策略中早期阶段的靶点验证。该技术为基于植入物的再生治疗在临床前开发阶段的风险控制提供了一个可重复的实验平台。
该方法通过实现生物活性筛选、检测方法开发以及骨再生流程中植入物验证的表面制备,契合从发现到临床前研究的连续过程。