2022年2月12日
本方案通过与光学显微镜和免疫细胞化学染色法进行比较,展示了使用结晶紫可视化病毒滴定的准确且客观的方法。
本实验方案的目的是制备病毒储备液并进行滴度测定,随后通过结晶紫染色进行可视化观察。为此,将首先演示常规的病毒滴度测定方法,然后进行染色操作。该滴定实验将在生物安全二级实验室的生物安全柜中进行,使用96孔板,持续七天。
为此,将使用相应的培养基接种偏好的细胞系至96孔板中,并培养至细胞完全融合。随后对病毒原液进行10倍系列稀释,即混合900微升培养基与100微升病毒,或相应稀释度的病毒。每次稀释后务必涡旋振荡各管,以确保培养基与病毒充分混匀,避免稀释误差。
在感染操作前,预先记录好培养板的布局以及每个稀释度的信息,以便于后续感染过程。感染前,用 200 µL 的 PBS 洗涤。然后在相应的孔中加入 50 µL 的接种物。
然后,在37摄氏度、5% CO2培养箱中孵育七天。七天孵育结束后,用200微升PBS洗涤。每孔加入50微升含4% PFA的PBS固定细胞,室温孵育15分钟。
孵育后,在每孔加入50微升水溶性结晶紫染液前,再次用200微升PBS洗涤细胞两次,室温孵育5分钟。最后,吸去孔中的结晶紫染液,可选择将培养板在室温下静置晾干2至5分钟,或用200微升水洗涤以去除多余染料,再进行观察。结果表明,复染后阴性细胞将被染色。
阳性孔将被确定。该信息将用于下述两种公式之一来计算最终病毒滴度。当比较两种方法所得滴度时发现,在某些情况下,与结晶紫染色相比,单细胞化学染色可检测到更多的阳性孔;同样,这两种染色方法均能比显微镜下直接观察检测到更多的阳性孔。
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本方案展示了一种利用结晶紫染色准确可视化病毒滴度的方法,并将该方法与光学显微镜和免疫细胞化学染色法进行了比较。
准确的病毒滴定对于抗病毒药物筛选和疫苗研发至关重要,不一致的细胞病变效应(CPE)检测可能影响候选药物的识别以及决策的制定。结晶紫染色法相较于免疫细胞化学染色,具有成本低、可重复性高的优势,有助于提高检测方法的标准化程度,降低早期发现流程中的变异性。该方法可增强对抗病毒效果评估的预测可靠性,并支持基于TCID50的大规模高通量筛选,适用于能够引起细胞病变效应的病毒。
该方法适用于从早期命中确认到先导化合物优化的抗病毒药物发现全过程,其中准确的病毒滴定可为构效关系和耐药性分析提供依据。