2022年4月4日
本研究旨在通过将多巴胺载入华通氏胶间充质干细胞来源的外泌体,获得一种制剂。本方案详细描述了外泌体的分离与表征、药物载入所得外泌体的过程,以及所开发制剂的细胞毒性活性。
外泌体可能是指细胞分泌的、大小在14至200纳米之间的囊泡,其来源于细胞内囊泡的分化过程,并参与细胞内物质运输和细胞间通讯,属于细胞外囊泡中最小的亚群。外泌体由早期内体分化形成,起源于细胞膜。干细胞可以从不同来源分离获得,例如骨髓或脂肪组织。
但成体组织来源的干细胞具有更高的免疫原性。由于外泌体体积较小,据称其在中枢神经系统疾病中发挥了重要作用,因为它能够穿过血脑屏障。首先,用五毫升 PBS 清洗已接种的华通氏胶间充质干细胞。然后加入五毫升胰蛋白酶 EDTA 溶液,并将培养瓶放入培养箱中。
孵育后,收集细胞,在1,500 G离心5分钟。然后弃去上清液,向试管中加入1毫升含10% FBS的DMEM-F12培养基。用PBS洗涤培养的细胞。
洗涤后,向细胞中加入无血清的 DMEM-F12 培养基,并置于培养箱中。为分离外泌体,收集无血清培养基,在 4°C 条件下以 300 G 离心 10 分钟。将上清液转移至另一离心管中,并通过逐步增加离心速度的连续离心法进行处理。
最后一次离心后,缓慢吸除上清液,并将沉淀物溶解于1毫升PBS中。涡旋振荡混匀,随后在4摄氏度条件下以110,000 G超速离心70分钟。向先前通过超速离心收集的外泌体悬液中加入3毫升PBS,并使用0.22微米滤膜过滤,对稀释后的悬液进行过滤除菌。
然后将500 µL灭菌后的外泌体悬液转移至另一管中。接下来依次加入500 µL浓度为0.5 mg/mL的多巴胺溶液和皂苷至灭菌悬液中。孵育后,对悬液进行超速离心。
该样本可用于纳米颗粒追踪分析(NTA)和动态光散射(DLS)分析,以表征载有多巴胺的外泌体,或在零下20摄氏度保存以备后续使用。在NTA分析中,测定来源于华通胶的外泌体平均粒径为98纳米,载有多巴胺的外泌体为110纳米。NTA与DLS分析所显示的纳米颗粒数量结果相互一致。
脐带华通胶来源的外泌体的zeta电位测定为-15.7毫伏,载有多巴胺的外泌体为-17.6毫伏。高效液相色谱分析载有多巴胺的外泌体在6.45分钟时检测到多巴胺的峰。累积药物释放曲线显示,在最初8小时内,74.8%的包封多巴胺从外泌体中释放出来。
研究了载有多巴胺的外泌体及游离外泌体对成纤维细胞的细胞毒性。尽管载有多巴胺的外泌体未表现出任何细胞毒性作用,但皂苷显著降低了成纤维细胞的活力。MTT实验显示,当成纤维细胞经载有多巴胺的外泌体处理后,细胞活力有所增加。
采用单因素方差分析(one-way ANOVA)评估结果的统计学显著性。此外,还研究了不同浓度的游离外泌体对成纤维细胞的细胞毒性作用。当游离外泌体浓度为25 µL/mL时,成纤维细胞的存活率更高。
中枢神经系统中,外泌体的大小对可塑性、神经反应、细胞间通讯以及大脑中的神经发生等过程起着至关重要的作用。此外,由于外泌体具有特定的表面特性,已观察到它们能够与靶细胞相互作用,并在药物递送过程中传递药物活性成分。在本研究中,我们首次通过将多巴胺封装入干细胞来源的外泌体,开发出一种新型药物制剂。
他提出,这种制剂将对帕金森病的治疗具有广阔前景。
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本研究聚焦于脐带华通胶间充质干细胞来源的载多巴胺外泌体的制备。该方案详细描述了外泌体的分离与表征、药物负载以及细胞毒性活性的评估。
基于外泌体的纳米载体为小分子跨越血脑屏障递送提供了有前景的平台,解决了中枢神经系统药物开发中的关键挑战。将多巴胺包封于干细胞来源的外泌体中并对其进行表征,展示了在早期发现阶段评估药物递送载体的可重复工作流程。该方法通过实现对载体效能和细胞毒性的定量评估,增强了转化神经科学项目中的预测可信度。
这种基于外泌体的载体系统适用于从早期发现到临床前研究的连续过程,可在确定先导化合物之前实现迭代优化。