2022年12月16日
钙成像的TrackMate分析(TACI)是一款开源的ImageJ插件,用于3D钙成像分析,可检测z轴方向的运动,并识别每个z层堆栈的最大值,以表示细胞在相应时间点的强度。该插件能够分离在横向(x/y方向)重叠但位于不同z平面的神经元。
在钙成像记录过程中,细胞会在各个方向上移动。目前已开发出多种工具用于校正 X 和 Y 方向的运动,但 Z 轴方向的运动也需要明确诊断并进行校正。TACI 是一款用户友好的开源 ImageJ 插件。
它可检测Z轴漂移,并对各个方向存在运动的3D钙成像进行分析。制备果蝇幼虫后,用PBS清洗三次。将75微升PBS滴加到玻片中央。
取一至两条幼虫置于PBS中,将热电偶微探针放置在幼虫附近。用玻璃盖玻片覆盖幼虫和热电偶微探针,并用指甲油密封。将载玻片置于显微镜载物台上。
使用25倍物镜找到焦平面,并将热电冷却器放置在载玻片上。在共聚焦软件中,对目标荧光细胞进行调焦。调整激光功率以避免信号过饱和,并在Z轴堆栈设置中设定第一层和最后一层的位置。
同时开始Z轴层扫成像和温度记录。调节供给帕尔帖元件的电源,以改变帕尔帖表面的温度。随后,停止Z轴层扫成像和温度记录。
下载 TACI 钙成像点阵 jar 文件后,通过点击菜单栏中的“Plugins”,然后在下拉菜单中选择“Install”,将插件安装到 Fiji 中。随后重启 Fiji,并通过点击“Plugins”并选择 TACI 钙成像插件来运行该插件。选择重命名功能,以将 TIFF 文件名转换为所需的结构。
单击“浏览文件夹”以选择需要重命名TIFF图像的文件夹,并等待文件名自动填充为文件夹名称。检查最大T位置和最大Z位置。确保最大T位置和最大Z位置的参数值包含所有数字。
按顺序输入每个参数的位置。如果TIFF文件名中不包含相应短语和通道,请将对应的参数值留空,并按顺序选择NA。如果有任何后缀文本,请添加到后缀参数中。
单击“重命名”以创建一个同名文件夹,名称后跟下划线 R。注意,TIFF 文件的文件名已在文件夹中重新排列,以兼容“整理”功能。接下来,使用“整理”功能将处于相同 Z 位置的 TIFF 图像保存到同一个文件夹中。通过单击“浏览文件夹”来选择需要整理 T 图像的文件夹。
如果参数 CSV 文件存在,请等待参数值自动填充。如果参数 CSV 文件不存在,则手动填写参数值。确保相位和通道的参数值包含存在的字母,而 T 位置和 Z 位置的参数值应分别为 T 和 Z 位置的最大数值。
如果图像文件名不包含相位或通道信息,请输入 NA。需要时通过取消勾选“R 图像灰度”复选框来生成灰度 TIFF 图像。单击“组织”以创建一个同名文件夹,其名称后跟下划线、gray、下划线和 stacks,并在该文件夹中生成以相同名称命名、后跟下划线和 Z 位置编号的子文件夹。随后可观察到 TIFF 文件按 Z 位置被分类至相应文件夹中,同时会生成一个名为 param.csv 的文件,其中包含参数及其对应的值。
现在使用 Fiji 中的 TrackMate 从每个 Z 位置提取目标细胞的荧光强度。在 Fiji 中打开 Z 位置文件夹中的 TIFF 图像,通过点击插件并选择“跟踪”(Tracking),然后选择 TrackMate 来运行 TrackMate。使用 DOG 或 LOG 检测器调整参数。
调整斑点直径阈值和中值滤波参数。设置滤波器以去除无关信号。设定轨迹连接的最大距离、空缺填补的最大距离以及空缺填补的最大帧间隔。
将感兴趣区域的荧光强度导出为 CSV 文件。为每个神经元创建一个文件夹,并使用神经元编号命名,从编号为零的神经元开始。
将包含相应神经元荧光信息的 CSV 文件保存至文件夹中。将 CSV 文件命名为“mean intensity Z position number dot CSV”,文件中至少包含两列:position T 和 mean intensity,或 mean intensity channel one。创建名为 background_underscore_list dot CSV 的文件,该文件以特定格式包含所有神经元的信息,起始神经元编号为 neuron zero。
填写神经元编号,例如在第一行填写神经元零。然后提供所分析的每个 Z 位置的背景强度。如果对神经元零分析了四个 Z 位置,则在神经元零下方填写四个背景强度值。
将生成的背景列表点 CSV 文件以及包含荧光信息 CSV 文件的文件夹保存在同一文件夹中。打开 TACI,选择提取功能,然后通过点击浏览文件来选择该文件夹。
背景文件将自动填充。请填写T位置的最大数量。单击“提取”以创建结果文件夹,其中包含每个神经元的CSV文件和图表。
CSV 文件包含每个 T 位置的最大荧光强度以及 ΔF/Δ0 值。图表为 ΔF/F0 与 T 位置关系的折线图。使用合并功能,对所有神经元的 ΔF/F0 值进行平均。
计算标准误(SEM),并绘制平均 ΔF/F₀ 随 T 位置的变化图。通过点击“浏览文件”选择由提取函数创建的结果文件夹,并在相应位置填入最大的 T 位置数量。
单击“合并”以创建一个合并的数据文件夹,其中包含一个合并的带下划线的数据 CSV 文件和一张平均 ΔF/F₀ 的 PNG 图。CSV 文件包含每个 T 位置处的平均值及标准误(SEM)ΔF/F₀ 信息。该图是以 T 位置为横坐标的平均 ΔF/F₀ 折线图。
表达 GCaMP6M 的果蝇幼虫冷敏感细胞在 27 摄氏度的非激活状态下几乎不显示荧光。然而,在 10 摄氏度时,细胞内钙水平迅速升高。当温度回升时,钙水平迅速下降。
表达GCaMP六F的果蝇脑神经元在0.1时间点的钙成像显示,七个神经元中有四个呈现荧光,且这些神经元的荧光强度随时间推移而降低。在存在辛醛的情况下,多个神经元变亮。在92时间点,10个神经元的荧光同时增强,表明这些蘑菇体神经元对辛醛气味产生响应。
TACI 可以分离重叠的细胞。在此最大投影图像中,识别出两个重叠的神经元。在正交视图中,这些神经元被分离开来,表明这些神经元出现在不同的 Z 位置。
橙色细胞在Z7处显示出最强信号,而蓝色细胞在Z10处信号最强。这两个细胞荧光的变化揭示了橙色细胞存在延迟但强烈的激活。在提取过程中,神经元出现的所有Z位置中的最大荧光值被用来代表该神经元在相应层面上的强度。
若使用 TACI 分析大量神经元,需在新开发的函数中整合跨 Z 轴位置的配准,并结合荧光信息。TACI 提供了一种用户友好的开源计算方法,用于三维胶囊成像分析,可在单个细胞出现在多个 Z 轴位置时检测其在 Z 轴上的细胞运动。
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本研究讨论了用于钙成像分析的开源ImageJ插件——钙成像轨迹追踪分析工具(TrackMate Analysis of Calcium Imaging, TACI)。TACI能够有效解决z轴方向的运动问题,并使研究人员能够识别在z方向上分离的神经元的最大荧光强度,从而提高在重叠神经元环境中钙成像的准确性。
定量三维钙成像在神经药理学和中枢神经系统药物发现中的机制性风险评估与靶点验证方面至关重要。TACI ImageJ 插件通过校正Z轴运动并分离重叠信号,实现神经元活动数据的稳健提取,直接支持在早期发现关键节点上的预测可信度。其开源可及性和工作流程标准化使 TACI 成为企业级研发团队可重复使用的工具,适用于需要可扩展、可重复成像分析的场景。
TACI 融入从早期假设验证到先导化合物识别及临床前验证的整个发现流程,提供标准化的成像分析支撑。