2024年2月16日
本文描述了优化荧光显微镜成像参数的方法,以在活体线虫中以单神经元分辨率观察内源性标记货物的轴突运输过程。
传统研究通常使用荧光标记的完整蛋白质来可视化外显子运输,但内源性货物的行为有所不同。内源性蛋白质的表达水平较低,使得可视化变得困难。我们提出了一些优化成像条件的建议,以更好地可视化标记突触小泡前体的内源性GFP Rab-3。
轴突运输领域中细胞质蛋白的丰度较高,使得利用传统荧光显微镜观察其动态过程变得困难。本方案建议结合消融步骤与时间可控的标记方法,以克服这些挑战。我们近期已通过优化本方案中所述的采集参数,并结合时间可控标记技术,成功实现了对内源性谱蛋白轴突运输的可视化。
这使我们能够鉴定出介导运输过程的机械装置的最初组分。首先,取出培养在细菌菌苔上的秀丽隐杆线虫的线虫生长培养基平板。使用铂金丝挑取线虫,将其转移至一滴0.5毫摩尔的左旋咪唑溶液中,并孵育20分钟。
用移液器将12微升M9培养基滴加到载玻片上的10%琼脂糖凝胶区域。使用毛发挑取器,从左旋咪唑液滴中转移10至20条线虫至琼脂糖凝胶区域的M9液滴中。在液滴上放置盖玻片,并将其旋转45度,以观察DA-9轴突中的运输过程。
随后,用粘稠的胶状凡士林密封盖玻片与载玻片之间的缝隙。首先,取已制备好的秀丽隐杆线虫成像载玻片,在4倍至20倍物镜下观察,以定位线虫。
记住它们的位置,然后切换至63倍放大镜进行详细成像。采集初始图像以评估采集参数。通过强度直方图监测信号强度,并在必要时增加激发激光强度。
接下来,使用488纳米激光漂白待分析的轴突区域。比较漂白前后信号强度,以确定漂白效率。采用2×2像素合并以增强单个运输事件的信号强度。
延长曝光时间,并在连续的时间点之间采用 300 至 700 毫秒的时间分辨率,以追踪 RAB-3 的运输事件。根据信号强度和运输事件的频率,记录时长为一至三分钟的时间序列图像。首先,在活体秀丽隐杆线虫(Caenorhabditis elegans)DA-9 轴突的非突触区域,对内源性 GFP 标记的 RAB-3 进行延时成像记录。
将延时成像数据文件导入 Fiji。然后,检查在图像采集过程中动物或轴突片段是否存在移动或轻微漂移。使用 StackReg 插件的刚体变换选项来校正任何移动或漂移。
使用分段线工具,并调整线宽以匹配轴突直径。用鼠标左键双击分段线图标,沿轴突片段绘制一条用于分析的线。然后使用 Fiji 插件 KymoReslice Wide,在其参数设置中将线宽方向上的最大强度值设为参数,生成图谱。
使用直线工具在时空图中追踪运输事件。分别追踪单个运输事件,并将每条直线保存至 ROI 管理器。在 Fiji 中选择测量参数,如面积、边界矩形、平均灰度值和费雷特直径。
然后,将结果表粘贴到电子表格中进行计算。将宽度乘以相机的分辨率,得到以微米为单位的运行长度。为了确定运动事件的持续时间,将高度乘以连续时间点之间的采集时间。
将暂停时间计算为连续两次运动之间速度为零的运行持续时间。将事件总数归一化为每分钟单位轴突长度片段的kymograph总长度,以获得单位时间单位长度的事件数。使用Feret角度工具,将事件分类为顺向运输和逆向运输。
对于通过从近端到远端绘制分段线生成的明场图像,使用Feret角来确定每个事件的方向性。
本研究旨在优化荧光显微镜参数,以增强对活体线虫中内源性标记货物轴突运输的可视化效果。该方法旨在解决由细胞质蛋白丰度过高所带来的技术挑战。
在活体 C. elegans 中对轴突运输进行稳健的可视化,可高可信度地研究神经元内货物运输的动力学,支持神经生物学相关研究流程中的早期发现和机制层面的风险排除。针对内源性标记货物优化的荧光显微镜参数,解决了信号检测与定量测量中的关键挑战,直接影响检测方法的开发和靶点验证。这些进展推动了可重复、定量化的实验流程,对转化神经科学及神经退行性疾病研究领域至关重要。
本方案通过实现对活体模型生物中轴突运输的定量、可重复成像,融入了从发现到临床前研究的连续过程。