2024年5月24日
EUCAST 已开发出一种用于自动化血培养的直接抗菌药物敏感性试验(AST)方案。然而,通过在自动化微生物鉴定系统中采用直接接种物制备方案,可避免对该方法依赖于质谱法进行微生物鉴定的需求。该方法可在样本采集后 24 小时内提供 AST 报告。
本研究旨在评估利用自动化微生物鉴定系统直接从呈阳性的血培养瓶中鉴定革兰阴性菌的诊断准确性,目的是将其作为欧洲抗菌药物敏感性试验委员会(EUCAST)快速抗菌药物敏感性试验方法早期临床报告的工具。EUCAST快速药敏试验(RAST)方法于2018年首次推出,可在自动化血培养瓶报阳后4至8小时内完成抗菌药物敏感性试验结果的报告。
该方法涉及直接从已呈阳性标记的培养瓶进行 Kirby-Bauer 纸片扩散试验,并在 4、6 或 8 小时内读取结果。根据 EUCAST RAST 方法进行临床报告时,微生物鉴定是确定药敏试验结果解释类别的先决条件。实施该方法的主要挑战是在 8 小时内完成微生物的早期鉴定,尤其是在缺乏质谱仪等设备的资源有限环境中。
我们发现,直接接种方案在鉴定可报告药敏试验结果的革兰阴性菌(包括大肠埃希菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌和鲍曼不动杆菌复合体)时,准确率约为94%。这种直接鉴定革兰阴性菌的方法,比经过过夜培养后再鉴定的标准方法快约四倍。接下来,我们将重点评估这种针对革兰阴性菌败血症的临床报告方法对患者预后的影响,具体指标包括住院时长和死亡率。
此外,它还可作为一种减少抗菌药物使用以促进抗菌药物管理的工具。首先,在二级生物安全柜内,用70%异丙醇擦拭含有单一形态革兰氏阴性菌的自动化血培养瓶的隔膜。然后,用配备21号针头的无菌注射器吸取一毫升血培养液混合物。
将混合物的一大滴加至平板培养基表面。划线接种后,将培养物置于37摄氏度下培养18至24小时。在生物安全柜内观察平板上是否形成单菌落。
接下来,使用分液瓶将三毫升无菌生理盐水加入 aMIAST 管中。然后用无菌直接种针挑取三至五个形态相似的菌落。将接种物转移至第一支试管中,用生理盐水和比浊仪将菌液浊度调整至 0.47–0.63 麦氏单位。
然后将革兰氏阴性 aMIAST 鉴定卡的毛细管附件放入第一支试管中。将选定的卡片放置在卡夹上。现在将卡夹装入填充室的指定位置,使样本条形码朝内。
关闭门并按用户界面屏幕上的填充按钮。填充循环完成后,系统上的蓝色指示灯将闪烁。现在将卡盒从填充室转移至加载室。
加载完成后移除盒式废液。将试管中剩余的悬液转种至CLED琼脂平板,以检查分离物的纯度。标准接种物方案在204株测试分离株中鉴定出105株为可报告的革兰阴性菌,主要鉴定出的菌种为大肠埃希菌(Escherichia coli)、肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)、铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)和鲍曼不动杆菌复合群(Acinetobacter baumannii complex)。
首先,在二级A类生物安全柜内,用70%异丙醇擦拭含有单一形态革兰氏阴性菌的自动化血培养瓶的橡胶隔膜。然后,用配备21号针头的无菌注射器抽取5毫升血液培养液混合物。接下来,对橡胶分离管的橡胶隔膜进行消毒。
将血培养液混合物转移至离心管中,在160 ×g 条件下离心10分钟。然后在生物安全柜内小心地用移液器吸除上清液。将上清液转移至一个新的普通采血管中。
将盖好的小瓶放入离心机中,以2000 G离心10分钟。然后用无菌移液管吸除上清液。接着使用分液瓶向aMIAST管中加入3毫升无菌生理盐水。
使用无菌接种环,从冻存管底部挑取细菌沉淀物,并接种至aMIAST培养管中。使用无菌生理盐水和比浊仪将菌悬液的浊度调整至0.47–0.63之间。随后,将革兰阴性aMIAST鉴定卡的毛细管附件插入第一根试管中。
将选定的芯片正确放置在卡夹中。现在将卡夹装入填充室的指定位置,确保样本条形码朝内,关闭门,然后在用户界面屏幕上按下填充按钮。填充循环完成后,系统上的蓝色指示灯将闪烁。
现在将盒式装置从填充室转移至加载室。加载完成后,移除盒式废液。将试管中剩余的悬液转接到CLED琼脂上进行传代培养,以检查分离物的纯度。
使用直接接种法鉴定的七份阳性血培养瓶结果在该物种水平上存在分歧。通过标准接种法鉴定的105份可报告RAST的革兰阴性菌中,有98份通过直接接种法正确鉴定。在99份不可报告RAST的革兰阴性菌中,有四个阳性血培养瓶鉴定出可报告RAST的革兰阴性菌。
首先,在生物安全柜中放置两个未接种的90毫米Mueller-Hinton琼脂平板。戴上手套后,用70%异丙醇擦拭含有单一形态革兰阴性菌的自动化血培养瓶的隔膜。使用无菌注射器从血培养瓶中吸取100至150微升未稀释的血培养液。
将样品加入穆勒-欣顿琼脂平板的中心。然后使用无菌棉拭子,轻轻将菌液在平板上朝三个方向涂布均匀。接着,每个平板上放置不超过六个抗菌药物纸片。
将平板转移至35摄氏度的有氧培养箱中培养八小时。接种完成后,观察分离物的纯度。在八小时内(正负五分钟)读取抑菌圈结果。
使用短时间孵育的RAST折点表来解读结果。在aMIAST中核对细菌鉴定结果后,进行RAST方法的每周质量控制检测。
将四支无菌玻璃试管放置于试管架上。向试管中加入无菌生理盐水。随后,用无菌移液器和吸头将质控菌株从过夜培养的分离菌落转移至第一支试管中,制备0.5麦氏浊度标准的菌悬液。
从第一支试管中转移10微升悬浮液至第二支试管。混匀后,从第二支试管中转移10微升悬浮液至第三支试管,再转移至最后一支试管。接着,用无菌注射器从最后一支试管中吸取1毫升接种物。
用70%异丙醇擦拭隔膜后,将接种物转移至自动血培养瓶中。同时,使用另一支无菌针头向同一血培养瓶中加入5 mL无菌全血。将该培养瓶置于连续血培养监测系统中孵育,直至仪器提示阳性。
本研究评估了使用自动化微生物鉴定系统直接从阳性血培养瓶中鉴定革兰阴性菌的诊断准确性,旨在通过欧盟抗菌药物敏感性试验委员会(EUCAST)快速抗菌药物敏感性试验(RAST)方法促进早期临床报告。
加快革兰氏阴性病原体的鉴定和抗菌药物敏感性测试(AST)对于脓毒症的及时干预至关重要,尤其是在资源有限的环境中。利用自动化微生物鉴定系统实施直接接种法(DIP),可快速实现无需质谱技术的EUCAST RAST方法,将检测周转时间从数天缩短至数小时。这一能力有助于更早地基于数据制定治疗决策,并提升传染病研发整体项目的预测可靠性。
该方法在临床分离株获取与药敏试验(AST)的接口处进行整合,架起了传染病研究领域早期发现与转化研究之间的桥梁。