2025年3月7日
本文介绍了一种用于定量评估细胞在颗粒状水凝胶内部及其界面处三维迁移的实验方案。
我们的研究重点是利用颗粒状水凝胶的独特性质,研究细胞在组织再生过程中的运动行为与功能。在理解其转化应用意义时,对细胞微环境响应的建模至关重要。随着三维多孔支架的应用日益增多,迫切需要更全面的三维迁移检测方法,以更真实地模拟细胞在伤口愈合环境中的行为。
我们开发了两种从支架构建到成像与分析的三维实验流程,用于体外研究细胞运动与迁移。通过这两种新建立的检测方法,我们能够在伤口愈合的两个不同阶段追踪响应细胞:一是从大块组织向支架的初始浸润阶段,二是细胞被复杂支架包围后的移动阶段。首先,在96孔板的每个孔中,以每平方厘米接种120,000个人类皮肤成纤维细胞,至少设置六个复孔。
经过过夜孵育后,使用移液器或抽吸装置从细胞孔中移除培养基。使用正向置换移液器,将每种凝胶条件下的 20 微升染料加入各孔中。使用设定为 25 摄氏度的板式旋转转子离心机附件,以 100×g 离心 15 秒,加速度和减速度均设为 8,以使凝胶表面平整。
将培养板旋转180度,再次离心,以确保凝胶在孔底均匀分布。为无菌光交联凝胶,使用365纳米的聚焦光照处理30秒,使支架退火。所有支架形成后,向每孔中加入200 µL培养基,在37 °C孵育30分钟。
使用共聚焦显微镜对细胞进行成像,以捕获其迁移行为。进行图像分析时,打开 Imaris 图像转换软件以进行批量转换。将显微图像拖放到转换软件中,并在软件界面内选择一个文件夹以导入文件。
依次选择每个文件以设置体素大小。按下“全部开始”以启动转换。接下来,在 Imaris Arena 软件中,从 arena 中选择一幅图像以开始处理。
单击主工具栏中的“图像处理”选项卡。然后,单击通道1的下拉菜单并选择“背景减除”。按“确定”返回3D视图。
在小型工具栏中,单击标有“添加新表面”的蓝色圆润形状图标,以创建名为“表面 1”的可编辑对象选项卡。使用蓝色箭头按钮手动为所有重复样本生成参数。将表面细节设置为 0.7 微米,并选择背景减除和局部对比度。
将平均细胞长度输入到可容纳于对象框内的最大球体的直径中。对于阈值分割,确定强度直方图以仅分割最亮的细胞。启用“分割相接触对象”、“区域生长”功能,并将种子点直径设置为与先前使用的直径一致。
为保存用于批量分析的创建参数,请点击标有“Creation”的魔棒图标。点击“store parameters for batch”,命名文件,然后点击“OK”。为收集所有细胞高度,请点击“Detailed”选项卡。从下拉菜单中选择特定数值,然后选择“Position Z”。
单击保存图标,将所有Z轴位置和分类信息导出为XLS文件。首先,在超净工作台中将PBS倒入培养皿,然后用移液器将20微升细胞培养液滴加到培养皿倒置的盖子上。将盖子重新放回培养皿上,并将培养板进行孵育,以获得悬滴培养的3D球状体。
使用正向置换移液器将15微升凝胶无菌加入透明96孔板的孔中,以设置PLOSMA。使用板式旋转转子离心机附件,在1,000g条件下离心10秒,使凝胶表面平整。将板翻转180度后再次离心,以确保凝胶分布均匀。
然后,使用365纳米的聚焦光照射30秒,以退火支架并从顶部对凝胶进行光交联。将悬挂液滴的培养皿无菌转移至组织培养罩内,并将皿盖倒置。使用20微升移液枪,缓慢吸取一个液滴,直至类球体进入枪头,然后将液滴挤出至孔中央的支架上。
将培养板置于37摄氏度孵育2小时,使类球体附着于支架上。孵育后,用移液器在每个类球体上方再添加15微升凝胶。以300g离心15秒,每个方向各一次,以确保凝胶均匀分布。
使用紫外线照射使凝胶顶层退火,方法如前所述。将培养板置于共聚焦显微镜下,在选定最低和最高Z平面后对类球体进行成像。将图像导入Imaris Arena软件后,点击通道1的下拉菜单,选择背景扣除。
点击面板底部的“确定”按钮。在3D视图中,按下“显示调整”弹出窗口中的“自动调整所有通道”按钮,并根据需要进行校正。在较小的工具栏中,单击“添加新参考帧”图标,以创建一个标为“参考帧1”的选项卡。
将原点在三个平面上均移动至类球体的中心。在同一工具栏中,单击带有橙色球体的图标以添加新的点,创建一个名为 Spots 1 的选项卡,然后按蓝色箭头按钮继续。进行阈值分割时,调节强度直方图,仅分割最亮的部分。
使用切片器浏览图像堆栈以确保准确性。按三次蓝色的“下一步”箭头。取消勾选“在切片器上渲染”,或点击设置面板上的黄色方形图标。
单击“统计”选项卡。在下拉菜单中,选择特定值和距原点参考系的距离。单击“保存”图标。
为保存所有更改和分析结果,请点击主工具栏中的保存图标。该方法被用于评估组织界面处的细胞浸润情况。迁移细胞在Z轴上的中位位置从0小时到24小时显著增加,表明细胞发生了明显的垂直移动。
沿Z轴的细胞迁移倍数变化在24小时后增加了一倍。采用PLOSMA方法接种的细胞在24小时后表现出从类球体核心显著扩散和迁移的现象。三维重建图像显示,PLOSMA支架中的细胞在24小时后广泛铺展,并可见向外延伸的突起结构。
使用“斑点”功能处理后的3D图像显示,细胞在支架中的位置呈分散分布,表明细胞发生了广泛的迁移。细胞迁移的平均距离超过200微米,且在不同样本间结果一致。PLOSMA支架中细胞的Z轴高度折叠变化约为4,表明细胞有显著的向上移动。
本文介绍了一种在颗粒状水凝胶内部及向其内部进行三维细胞迁移定量评估的实验方案。该研究重点关注细胞运动在组织再生中的意义。
在颗粒状水凝胶中进行的定量三维细胞迁移实验填补了再生医学和组织工程领域中细胞行为建模的关键空白。这些标准化的工作流程可实现对支架性能的可预测性评估,有助于生物材料研发早期的风险降低和转化连续性。&D. 测量和比较细胞迁移动态的能力为支架优化和产品组合推进决策提供依据。
这些迁移量化方法贯穿从早期发现到临床前支架评估的全过程,支持迭代优化和转化研究的一致性。