2025年12月19日
本方案介绍了一种简单的微吸法技术,用于从冷冻保存的马精液中分离具有活力的体细胞(SCs)。与传统方法不同,该技术避免了长时间 体外 培养并克服精子污染,可立即用于体细胞克隆。
我们的目标是证明,从冷冻保存的马精液中获得的体细胞可用于恢复具有高遗传价值的个体。目前面临的挑战是能够筛选出具有完整二倍体DNA的体细胞,用作核供体。首先,从液氮罐中取出马精液细管。
将它们暴露在空气中10秒,并在37摄氏度的水浴中解冻30秒。取250 µL解冻后的精液样本,用1 mL添加了补充物的DMEM-F12培养基进行稀释。
将精液混合物在37摄氏度下孵育30分钟。从孵育后的稀释液中移取25微升至一试管中,并加入975微升含0.1毫克/毫升聚乙烯醇或聚乙烯吡咯烷酮的DPBS进行稀释。轻轻混匀悬浮液。
在整个细胞收集过程中,将稀释后的精液混合物保持在37摄氏度。将含有稀释马精液的培养皿盖置于显微镜载物台上,以准备体细胞收集。选择适合直径的微量移液管用于体细胞收集,并将其连接至机械抽吸系统。
小心地将微量移液器插入微滴中,并与培养皿盖底部对齐。一旦移液器吸入培养基,即开始单个捕获体细胞。聚焦于微滴底部,此处可见多种细胞形态。
将微量移液器吸头置于每个体细胞旁边,在负压下进行吸取。收集所有圆形和拉长的细胞,无论其大小。收集10个细胞后,将其沉积到培养皿盖上表面的10微升微滴中。
在整个收集过程中,将所有收集到的体细胞保留在该微滴内。当收集到所需数量的体细胞后,使用微滴进行简单的洗涤操作,以去除精子、碎片及微生物污染物。使用第二个培养皿盖,对体细胞进行连续的三步洗涤。
使用微量移液器将体细胞转移至第一滴液滴中,静置3到5分钟。采用相同操作,将细胞从第一滴转移至第二滴。重复转移一次,将体细胞放入第三滴液滴中。
最后,将分离得到的体细胞移入已准备好的微滴中,用于体细胞核移植。微吸管技术成功地从冷冻保存的马精液中回收了体细胞,在三匹种马中,每小时捕获细胞数介于317.7至424.7个之间,其中3号种马的回收效率最高。
根据大小和形态,鉴定出五种不同的体细胞类型。我们鉴定出一种在冷冻保存的马精子中形态和活力均不同的体细胞群体,该细胞可能可用作核供体。可根据其形态特征筛选这些细胞,且该操作无需建立原代培养。
我们将重点提高马精液浓缩后这些细胞的存活率。
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本方案介绍了一种微吸技术,用于从冷冻保存的马精液中分离出有活力的体细胞。该方法避免了长时间的体外培养和精子污染,可立即用于体细胞克隆。
从冷冻保存的马精液中高效回收有活力的体细胞,解决了先进生殖技术在遗传资源利用中的一个关键瓶颈。该微吸管技术可直接获取二倍体供体细胞用于体细胞核移植(SCNT),避免了长期培养过程,并减少了精子污染的风险。该方法拓展了动物生物技术流程中遗传资源抢救和遗传组合多样化的潜力。
这种微吸管法在遗传资源回收与基于体细胞核移植的克隆技术之间实现了整合,将冷冻保存库与即时的核供体准备过程连接起来。