2008年3月17日
随着神经科学研究日益深入,对脑结构和神经回路的探究需要更高的精确度和分辨率。我们开发了一种利用尖端直径为50微米的硼硅酸盐微导管制备和植入脑内慢性输注系统的方法。
大家好,我叫Miles Cunningham。我和Ryan O'Connor以及Sydney Wong将共同演示用于持续递送神经活性物质的微型输注系统的构建。本工作是在哈佛医学院麦克莱恩医院的神经重建实验室完成的。
我们感谢悉尼 rbe 基金会和 Narsad 提供的慷慨支持。我们发现,神经活性试剂能够通过拉制的硼硅酸盐玻璃微导管,可靠地递送至特定脑区,其尖端直径比传统递送导管小五到十倍。在此幻灯片中,我们展示了一种常用的不锈钢灌注导管,以及本实验室自制的微导管。
输送导管尺寸的减小,意味着对所研究脑区造成的创伤显著降低。许多传统方法实际上会在目标区域或其内部造成损伤,从而使任何实验结果的有效性受到质疑。在此处的图A中可以看出,使用直径0.32毫米的导管对局部区域造成的破坏程度,相比之下,图B中使用50微米导管造成的损伤明显更小。这些低倍图像为未染色Vibram切片的湿封片照片。
随后,这些相同的切片用苏木精和伊红(H&E)染色,并在更高倍数下成像。为了进一步说明使用微型套管后组织损伤的减少,微输注系统的组件包括一个 Zet Mini Osmo 泵及其不锈钢流量调节器(已移除法兰),2至3厘米长的聚乙烯管,一个定制的BOA硅酸盐微型套管,以及一根28号导丝。此即为已组装完毕、准备植入的微输注系统。
此处使用标准的垂直微量移液器拉制仪来制备符合特定规格的微细导管。水平拉制仪同样适用。通过调节加热元件的温度和拉制仪的张力,可对Bora牌硼硅酸盐玻璃管进行定位和固定。
您可以可靠地复制出具有特定直径和长锥形柄的微型套管。将Bora石英毛细管加热,并施加轻柔压力,使管材弯曲至所需的程度。该弯曲位置应距离微型套管尖端适当距离,以适应目标脑区的深度,同时确保高于颅骨的位置有足够的 Clearance。
该微导管远端管的最终长度,其弯曲部分约为9到10毫米。显然对结果不满意,Ryan重新插入微导管,进行微调,以完善此处的弯曲角度。
使用金刚石刻刀效果要好得多。悉尼演示了一种切割硼硅酸盐玻璃管的方法:将玻璃管紧贴硬质表面固定,在弯曲处近端约五毫米的位置进行切割,使微导管的远端自由悬于边缘之外。她沿管壁进行环向划痕。
然后通过施加轻柔的压力,她在划痕处将导管整齐折断。可用永久性墨水对套管细小透明的尖端进行染色,以方便观察。在放大条件下进行手术时,使用显微解剖剪将微套管尖端剪至所需直径。
可用目镜或显微镜确认尖端直径。将28号不锈钢丝切成约三厘米长,制备成径向定位导丝。然后使用镊子在每根导丝末端弯制一个直径约两毫米的小钩。
将对准导线与微套管中长约两到三厘米的聚乙烯管一同放入培养皿中。微输注系统可使用大多数实验室常见的仪器构建。将微型镊子、常规镊子、手术剪和止血钳放入手术单中进行灭菌。
使用标准高压灭菌器对仪器、微灌注系统组件以及数张铝箔进行灭菌。小心地从包装中取出流量调节器,并放入无菌培养皿中。用止血钳牢固夹住调节器,然后用剪刀将塑料法兰从不锈钢调节管上移除。
将微型渗透泵从包装中取出,并置于无菌培养皿中。将不锈钢管插入聚乙烯管内约两到三毫米,并使用光固化环氧树脂将两者密封固定。我们使用My Neural Lab生产的Lummi Bond进行精细操作:用一个1毫升注射器吸取Lummi Bond,并在强光下使用27号针头作为涂布工具,Lumon可在数秒内完成固化。
通过将微型渗透泵保持在直立位置,并使用制造商提供的填充针小心注入液体来完成填充。我们建议观察注入泵内的液体体积,和/或在填充前后称量泵的重量,以确保泵已完全充满且无缺陷。请注意,我们不建议重复使用泵。
将带有连接的聚乙烯导管的完整调节器插入微型渗透泵内。当泡沫调节器插入时,泵内的液体会被压入聚乙烯导管中。需记录初始时被液体填充的聚乙烯导管长度,并在泵于39摄氏度的无菌生理盐水中孵育12小时激活后,观察到该长度增加。
将已激活的微型渗透泵浸入无菌生理盐水中,以在微输注系统的最后组装步骤中提供一个无气泡的环境。使用连接细径塑料管并装有与泵内相同溶液的注射器,将聚乙烯管未填充部分中的空气排出。注意应将微导管内的空气完全排出。
类似地,可能需要使用显微镊子对聚乙烯导管的远端进行一定程度的扩张,然后插入微导管的近端。此时整个系统已无气泡或死腔,可从生理盐水浴中取出,并用无菌纱布擦干。随后使用Luma胶将微导管固定在聚乙烯导管上。为了将微型渗透泵的流速降低约一半,将无菌热石蜡倒入一个小的培养皿中,短暂浸没微型渗透泵的近端一半部分。
过量石蜡被吸除后,将微灌注系统重新放回无菌生理盐水中,保存至手术前。在手术植入前,将导丝连接至微导管的弯曲处。
将导丝的纵轴与将要进入脑组织的微导管部分对齐,并用鲁蒙固定。在此位置下,可将微输注系统置于立体定位仪操作器上。
使用操作臂夹具固定导丝,并用无菌缝线环从上方将泵固定。这样可支撑其重量,并通过镊子仔细弯曲导丝,使微导管与颅骨表面完全垂直,随后即可采用标准的立体定位手术方法植入微输注系统。导管通过黏合剂固定在颅骨表面。
我们使用Jaron的蜡材来塑形一个低轮廓的基台。然后将预备体上方多余的引导丝齐平于基台表面切断。使用安装在高速钻上的切割轮,可将微型渗透泵植入动物肩胛骨之间的皮下。
本方法相较于传统技术具有多项优势。可根据实验动物的物种和年龄进行定制化设计。硅胶管可塑造成与动物颅骨表面相贴合的形状。
因此,通过实现牢固的低剖面固定并避免使用大型颅骨基座,手术切口可轻松覆盖在流线型微输注基座上,从而降低感染风险以及动物的不适感,同时固定系统至颅骨所需的表面积更小。因此,后续或附加操作可在不受到较大基座干扰的情况下进行。但最重要的是,该方法可减少对输注部位局部环境的侵入性和创伤,从而最大限度地降低观察者效应。
这就是主动观测会对被观测现象所产生的影响。
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本文介绍了一种用于制备和植入脑内慢性输注系统的方法。该技术采用尖端直径为50微米的硼硅酸盐微型套管,可提高神经活性物质递送的准确性。
将神经活性物质精确递送至大脑特定部位,对于神经科学药物研发中的靶点验证和作用机制去风险化至关重要。该微型输注系统可降低侵入性并减少组织损伤,从而提高临床前模型数据的可靠性和可转化性。其可定制的低剖面设计支持在不同物种和研究设计中规模化应用,有助于提升项目筛选效率。
该方法通过假设验证、基于定量递送的筛选,以及通过减少生物学噪声来支持临床前连续性,从而整合到发现生物学中。