7 de septiembre de 2012
Una descripción detallada de ratón aislamiento de islotes se describe utilizando la técnica de canulación en pancreático ductal in situ y la perfusión de una combinación de colagenasa purificada y proteasa neutra.
El objetivo general de este procedimiento es aislar con éxito los islotes de un páncreas de ratón. Esto se logra primero aislando el páncreas del tejido circundante. A continuación, se canula el conducto biliar para que el páncreas pueda inflarse con la mezcla de colagenasa y proteasa.
Una vez inflado, se extrae el páncreas y los islotes se disocian cuidadosamente. Finalmente, los islotes aislados se filtran y siembran para su uso futuro. En definitiva, este método de aislamiento de islotes con colagenasa purificada y proteasa neutra se utiliza para obtener un rendimiento máximo de islotes y una morfología óptima de los mismos.
La principal ventaja de esta técnica frente a los métodos existentes de aislamiento de anillos traqueales es que hemos eliminado la variabilidad entre lotes mediante el uso de enzimas purificadas. Además, hemos modificado o mejorado algunos protocolos para mejorar la morfología de los anillos traqueales. Tras la eutanasia, cubra el torso con etanol al 70 % antes de abrir completamente la cavidad abdominal desde el ano hasta el diafragma.
A continuación, coloque el ratón sobre la plataforma de un microscopio de disección. Saque el ciego y el colon ascendente y colóquelos fuera de la cavidad corporal hacia el lado izquierdo; desplace los lóbulos del hígado contra el diafragma. Si no permanecen en esa posición por sí solos, aumente la abertura de la cavidad corporal.
Sujete el duodeno con fórceps curvos y localice el haz de la arteria hepática, la vena porta y el conducto biliar que conduce al hígado. Con otro par de fórceps curvos, inserte una sutura debajo del haz de la arteria, la vena y el conducto, y apriétela lo más cerca posible del hígado.
Utilizando dos pares de pinzas curvas, agarrar cuidadosamente el duodeno y localizar el conducto biliar en la papila. Con una punta de la pinza, perforar el páncreas y el tejido conectivo justo debajo del conducto biliar y cerca de la papila. Rápidamente, pasar la pinza a través del orificio e insertar una sutura, de forma suelta. Amarar la sutura alrededor del conducto biliar para formar un pequeño círculo utilizando pinzas de 90 grados.
Extraiga el intestino delgado hasta que el conducto biliar quede tenso. Realice un corte horizontal a través de la papila con tijeras muy finas sin desalojar el conducto biliar de la papila mientras sostiene el intestino. Introduzca una cánula en el conducto biliar y luego tense suavemente la sutura alrededor de la cánula.
A continuación, llene una jeringa de tres mililitros con 2,0 mililitros de la mezcla de colagenasa y proteasa. Inyecte esta mezcla en la cánula a un ritmo lento y constante. Una vez completada la inflación del páncreas, retire la cánula del conducto biliar.
Comenzando en el colon descendente, corte el tejido conectivo mientras se tira de los intestinos hacia arriba hasta alcanzar el conducto biliar. A continuación, separe el páncreas del bazo y de los tejidos circundantes. Finalmente, corte las suturas y retire el páncreas.
Una vez extraído, coloque el páncreas en un tubo de 50 mililitros que contenga cinco mililitros de HBSS sobre hielo. Una vez recolectadas todas las muestras, coloque los tubos de 50 mililitros que contengan tejido pancreático en un baño de agua a 37 grados Celsius. Agite suavemente el tubo durante 15 minutos y verifique la disociación del tejido.
Asegúrese de que el tejido se separe fácilmente sosteniendo el tubo por la tapa. Agite girando 12 veces para disociar aún más el tejido. Añada no más de 30 mililitros de HBSS y centrifugue.
Aspire cuidadosamente el sobrenadante y deje una pequeña cantidad de sobrenadante en el fondo para no perturbar la paleta celular. Utilizando una jeringa de 30 mililitros conectada a una aguja de calibre 14, agregue no más de 10 mililitros de HBSS y aspire la suspensión hacia arriba y hacia abajo dos veces. Filtre la mezcla celular a través de un colador plástico en forma de T hacia un tubo de 50 mililitros.
Lave con otros 10 mililitros de HBSS y centrifugue. Deseche el sobrenadante e invierta los tubos para drenar sobre una toalla de papel absorbente durante un minuto. Reuspenda cada tubo en 10 mililitros.
Frío 1100. Su capa opaca, la capa opaca con 10 mililitros, HBSS y centrifugar. Retire los 20 mililitros completos del sobrenadante utilizando una pipeta grande de 25 mililitros y pase el sobrenadante a través de un filtro invertido de 70 micrones.
Filtre los organoides oculares directamente en una placa de Petri y enjuáguelos pipeteando 10 mililitros de medio para organoides oculares a través del cultivo filtrado. Mantenga los organoides oculares en un incubador de cultivo de tejidos hasta que estén listos para el experimento. Los rendimientos, la morfología y la calidad de los organoides oculares son los parámetros generales utilizados para evaluar el éxito del aislamiento de organoides oculares.
Se muestra aquí la morfología típica de los islotes. Los islotes tienen una forma redonda a oblonga con un tamaño relativamente uniforme. Aquí, los islotes aislados fueron analizados para la secreción de insulina estimulada por glucosa.
La estimulación con insulina fue similar entre los islotes preparados con Sigma Type 11 en comparación con ci zyme TM, MABP, lo que indica una alta calidad en la preparación de los islotes. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo canular el conducto biliar de un ratón. Trabaje con colagenasa zyme y neutroproteasas para aislar sus islotes para cualquier ensayo.
Este artículo describe un procedimiento detallado para aislar islotes del páncreas de un ratón mediante la canulación ductal pancreática in situ y una mezcla de colagenasa-proteasa. El método tiene como objetivo mejorar el rendimiento y la morfología de los islotes, al mismo tiempo que minimiza la variabilidad.
El aislamiento de islotes pancreáticos primarios permite la evaluación de la función de las células beta en un contexto fisiológicamente relevante, lo cual es fundamental para la validación de dianas en diabetes y la reducción mecanicista de riesgos. La variabilidad en el rendimiento de los lotes de enzimas compromete la reproducibilidad entre campañas de descubrimiento, afectando la identificación de compuestos prometedores y la confianza predictiva. Este protocolo aborda la inconsistencia entre lotes mediante el uso de colagenasa y proteasa neutra purificadas, favoreciendo la preparación estandarizada y escalable de islotes para evaluaciones preclínicas.
El método se integra en el continuo de descubrimiento desde la validación del blanco hasta la identificación de compuestos activos y las pruebas de eficacia preclínica, donde la función de los islotes primarios orienta las decisiones de continuar o descartar.