2022년 10월 6일
현재 프로토콜은 표적을 검출하기 위해 빠른 3단계 압타머 기반 지수 증폭 분석의 사용을 보여줍니다. 샘플 준비, 신호 증폭 및 색상 현상은 카페인보다 테오필린의 존재를 인식하기 위해 이 시스템을 구현하기 위해 다룹니다.
이 방법은 바인딩 이벤트의 신호를 낮은 리소스 사용을 위해 시각적으로 감지할 수 있거나 흡광도 기반 기기를 사용하여 정량화할 수 있는 형태로 증폭하는 방법을 제공합니다. 이것은 관심 샘플에서 압타머 표적의 존재를 결정하기 위한 비교적 빠른 원팟 프로토콜입니다. 정량화가 필요한 경우 결과를 표준 검량선과 비교할 수 있습니다.
개인은 용액을 옮기고 혼합할 때 매우 정확해야 합니다., 불충분한 혼합은 부정적인 결과를 초래할 수 있기 때문입니다. 또한 배경 신호를 최소화하기 위해 사용할 때까지 시약과 용액을 차갑게 유지하십시오. PCR 튜브에 5 유닛의 T4 폴리뉴클레오티드 키나아제를 첨가하여 리보자임 절단 생성물을 활성화시키는 것으로 시작합니다.
그런 다음 1마이크로리터의 미리 준비된 5X 리보자임 완충액을 각 샘플 튜브에 추가합니다. 특이성을 시각적으로 입증하기 위해 1.5 마이크로리터의 2밀리몰 테오필린 또는 2 밀리몰 카페인을 각 샘플 튜브에 테스트 샘플로 추가하고 5-10회 피펫팅하여 각 샘플을 완전히 혼합합니다. 다음으로, 표적 특이적 앱타머 도메인을 포함하는 600나노몰 RNA 2마이크로리터를 각 샘플 튜브에 추가한 다음 피펫팅하여 구성 요소를 빠르게 혼합합니다.
이제 배경 신호를 최소화하기 위해 튜브를 콜드 블록에 놓습니다. 모든 반응 튜브를 준비한 후 각 샘플을 실온에서 정확히 3분 동안 배양합니다. 배양이 끝나면 샘플 튜브를 즉시 얼음으로 되돌립니다.
3.5마이크로리터의 니카제 중합효소 혼합물을 각 샘플 튜브에 넣고 잘 섞습니다. 그런 다음 주형 뉴클레오티드와 반응 완충액을 포함하는 31.5 마이크로리터의 EXPAR 반응 혼합물을 각 샘플 튜브에 추가하고 피펫팅으로 혼합합니다. 모든 샘플이 준비되면 타이머를 사용하여 준비된 샘플을 섭씨 55도에서 5분 동안 배양합니다.
배양 후 즉시 샘플 튜브를 얼음으로 되돌립니다. 발색을 위해 각 샘플 튜브에 2마이크로리터의 헤민 용액을 추가하고 잘 혼합합니다. 그런 다음 시중에서 판매되는 TMB 용액 58마이크로리터를 각 샘플 튜브에 넣고 잘 혼합한 다음 발색을 위해 배양합니다.
샘플을 눈으로 정성적으로 읽거나 원고에 설명된 대로 흡광도 플레이트 리더를 사용하여 결과를 정량화합니다. 최적화된 구조는 30분 안에 500나노몰 테오필린을 인식할 수 있습니다. 표적에 노출된 시료 전처리는 파란색을 띠는 반면, 표적이 없는 시료는 무색으로 남습니다.
30분의 발색 후 A450에서 측정된 신호로부터 표준 곡선을 준비하였다. 인큐베이션을 수행하지 않을 때는 샘플을 얼음 위에 보관하는 것이 중요한데, 최적화된 RNA라도 여전히 낮은 백그라운드 활성 수준을 나타내기 때문입니다.
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본 프로토콜은 테오필린(theophylline)과 같은 표적 물질을 검출하기 위한 신속한 3단계 앱타머 기반 지수 증폭 분석법을 설명합니다. 여기에는 시료 준비, 신호 증폭 및 발색 과정이 포함됩니다.
등온 지수 증폭법을 이용한 압타머 기반 검출 시스템은 초기 발굴 워크플로우의 표적 검증을 위해 신속하고 민감하며 시각적으로 해석 가능한 결과물을 제공합니다. 이 3단계 G-quadruplex 증폭 프로토콜은 정성적 및 정량적 판독을 모두 가능하게 하여, 분석법 개발 및 스크리닝의 전환점에서 견고한 의사결정을 지원합니다. 이러한 접근 방식은 표적 결합 및 특이성에 대한 예측 신뢰도를 높여, 포트폴리오 선별과 후속 분석 준비 단계에 직접적인 영향을 미칩니다.
이 aptamer-EXPAR 시스템은 초기 발견부터 리드 화합물 확인 단계까지의 연속 과정에 적합하며, 분자 인식에서 정량 분석법 개발로 이어지는 가교 역할을 합니다.