6 października 2022
Obecny protokół demonstruje użycie szybkiego, 3-stopniowego, opartego na aptamie testu wykładniczego amplifikacji do wykrywania celów. Przygotowanie próbki, wzmocnienie sygnału i rozwój koloru są omówione w celu wdrożenia tego systemu do rozpoznawania obecności teofiliny w porównaniu z kofeiną.
Metoda ta oferuje sposób na wzmocnienie sygnału ze zdarzeń wiązania do postaci, która jest wykrywalna wizualnie przy niskim zużyciu zasobów lub może być określona ilościowo za pomocą oprzyrządowania opartego na absorbancji. Jest to stosunkowo szybki, jednoetapowy protokół do określenia obecności celu aptamera w próbce będącej przedmiotem zainteresowania. Wyniki można porównać ze standardową krzywą kalibracyjną, jeśli pożądane jest określenie ilościowe.
Osoby muszą być bardzo precyzyjne podczas przenoszenia i mieszania roztworów, ponieważ niewystarczające wymieszanie doprowadzi do negatywnych wyników. Upewnij się również, że odczynniki i roztwory są przechowywane w chłodzie do czasu użycia, aby zminimalizować sygnał tła. Rozpocznij od aktywacji produktów rozszczepienia rybozymu poprzez dodanie pięciu jednostek kinazy polinukleotydowej T4 w probówce PCR.
Następnie dodaj jeden mikrolitr wstępnie przygotowanego buforu rybozymu 5X do każdej probówki z próbką. Aby wizualnie zademonstrować specyficzność, dodaj 1,5 mikrolitra dwumilimolowej teofiliny lub dwóch milimolowych kofein do każdej probówki jako próbki testowe i dokładnie wymieszaj każdą próbkę, pipetując od pięciu do 10 razy. Następnie dodaj dwa mikrolitry 600 nanomolowego RNA zawierającego specyficzną dla celu domenę aptameryczną do każdej probówki z próbką, a następnie pipetuj w celu szybkiego wymieszania składników.
Teraz umieść rurkę na zimnym bloku, aby zminimalizować sygnał tła. Po przygotowaniu wszystkich probówek reakcyjnych inkubować każdą próbkę w temperaturze pokojowej dokładnie przez trzy minuty. Pod koniec inkubacji należy natychmiast umieścić probówki z próbkami w lodzie.
Dodaj 3,5 mikrolitra mieszaniny enzymów polimerazy kazazy do każdej probówki z próbką i dobrze wymieszaj. Następnie dodać 31,5 mikrolitra mieszaniny reakcyjnej EXPAR zawierającej nukleotydy matrycowe i bufor reakcyjny do każdej probówki z próbką i wymieszać pipetując. Po przygotowaniu wszystkich próbek należy inkubować przygotowaną próbkę w temperaturze 55 stopni Celsjusza przez pięć minut za pomocą timera.
Po inkubacji natychmiast umieścić probówki z próbkami w lodzie. Dodaj dwa mikrolitry roztworu heminy do każdej probówki z próbką w celu opracowania koloru i dobrze wymieszaj. Następnie dodaj 58 mikrolitrów dostępnego w handlu roztworu TMB do każdej probówki z próbką, dobrze wymieszaj i inkubuj w celu uzyskania koloru.
Odczytać próbki jakościowo na oko lub określić ilościowo wyniki za pomocą czytnika płytek absorbancyjnych, zgodnie z opisem w manuskrypcie. Zoptymalizowany konstrukt jest w stanie rozpoznać zaledwie 500 nanomolowych teofilin w ciągu 30 minut. Preparaty próbek wystawione na działanie celu mają niebieski kolor, podczas gdy próbki niezawierające celu pozostają bezbarwne.
Krzywa wzorcowa została przygotowana na podstawie sygnału zmierzonego w A450 po 30 minutach wywoływania koloru. Ważne jest, aby trzymać próbki na lodzie, gdy nie przeprowadza się inkubacji, ponieważ nawet zoptymalizowane RNA nadal będzie wykazywać niski poziom aktywności tła.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
Niniejszy protokół przedstawia szybki, trzyetapowy test wykrywania teofiliny i podobnych celów, oparty na wykładniczej amplifikacji z wykorzystaniem aptamerów. Obejmuje on przygotowanie próbek, amplifikację sygnału oraz rozwój barwy.
Systemy detekcji oparte na aptamerach z izotermiczną amplifikacją wykładniczą oferują szybkie, czułe i wizualnie interpretowalne wyniki w procesie walidacji celu w początkowych etapach odkrywania leków. Ten trzystopniowy protokół amplifikacji G-kwadrupleksów umożliwia odczyty zarówno jakościowe, jak i ilościowe, wspierając podejmowanie trafnych decyzji w kluczowych momentach opracowywania i screeningu testów. Podejście to zwiększa pewność prognostyczną w zakresie wiązania celu i specyficzności, co bezpośrednio wpływa na selekcję projektów w portfolio oraz przygotowanie dalszych analiz.
Ten system aptamer-EXPAR wpisuje się w kontinuum od wczesnego etapu odkrywania do identyfikacji wiodących związków, stanowiąc pomost między rozpoznawaniem molekularnym a opracowywaniem analiz ilościowych.