29 grudnia 2023
Tutaj opisujemy wewnętrzny test aktywności czynnika tkanki pęcherzyków zewnątrzkomórkowych. Testy oparte na aktywności i testy oparte na antygenach zastosowano do pomiaru czynnika tkankowego w pęcherzykach zewnątrzkomórkowych z próbek ludzkiego osocza. Testy oparte na aktywności mają wyższą czułość i swoistość niż testy oparte na antygenach.
Niski poziom pęcherzyków zewnątrzkomórkowych dodatnich pod względem czynników tkankowych jest obecny w osoczu pacjentów z różnymi chorobami. Jednak większość testów opartych na antygenach, w tym ELISA i cytometria przepływowa, nie ma czułości pozwalającej na wykrycie tych niskich poziomów. W wielu pracach wykorzystano test ELISA lub cytometrię przepływową do wykrywania czynnika tkankowego w osoczu.
Nasz protokół mierzy aktywność czynnika tkankowego w osoczu z wysoką czułością i swoistością, chociaż istnieje pewna zmienność ze względu na zastosowanie testu funkcjonalnego. Istnieją komercyjne zestawy testowe, które mierzą poziom aktywności czynnika tkankowego w osoczu. Jednak zestawy te nie zawierają przeciwciał przeciwko czynnikom tkankowym, a zatem nie mogą rozróżnić generacji czynnika X zależnej od czynnika tkankowego i niezależnej od czynnika tkankowego.
Na początek rozmrozić izolowane próbki osocza krwi w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Przenieś 100 mikrolitrów każdej próbki osocza do probówek o pojemności 1,5 mililitra. Dodaj jeden mililitr bezwapniowego buforu HBSA do każdej probówki.
Odwirować próbki w temperaturze 20 000 G przez 15 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza. Odessać supernatant do 20 mikrolitrów bez naruszania osadu. Następnie dodaj jeden mililitr bezwapniowego buforu HBSA do każdej probówki.
Następnie pipetować w górę i w dół, aby rozpuścić osad. Wiruj każdą rurkę przez kilka sekund, aby zapewnić równomierne rozprowadzenie pęcherzyków zewnątrzkomórkowych. Następnie odwirować go w temperaturze 20 000 G przez 15 minut w temperaturze czterech stopni Celsjusza.
Ponownie odessać supernatant do 20 mikrolitrów bez naruszania osadu. Następnie rozpuść osad w 80 mikrolitrach bezwapniowego buforu HBSA. Pipetować zawiesinę w górę i w dół, aby uzyskać równomierną zawiesinę.
Aby zmierzyć aktywność czynnika tkanki pęcherzyków zewnątrzkomórkowych, najpierw odpipetuj 40 mikrolitrów próbki pęcherzyka zewnątrzkomórkowego do dwóch dołków z 96-dołkową płytką. Do pierwszej studzienki dodaj 11 mikrolitrów hamującego mysiego anty-ludzkiego TF IgG. Do drugiej studzienki dodaj 11 mikrolitrów myszy kontrolnej IgG.
Po inkubacji dodać 50 mikrolitrów roztworu mieszanki czynników do każdej studzienki. Przykryj płytkę folią, a następnie inkubuj płytkę przez dwie godziny w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Dodaj 25 mikrolitrów buforu HBSA EDTA, aby zatrzymać wytwarzanie czynnika 10a.
Rozpuść substrat chromogenny w wodzie destylowanej do stężenia czterech milimoli. Teraz dodaj 25 mikrolitrów substratu chromogenicznego do każdej studzienki. Przykryj talerz folią, a następnie zawiń go w folię aluminiową.
Inkubować płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 15 minut. Następnie odwirować płytkę o sile 1 500 G przez jedną minutę, aby usunąć wszelkie pęcherzyki. Następnie umieść płytkę w czytniku płytek o długości fali 405 nanometrów.
Użyj krzywej standardowej wygenerowanej za pomocą relipidowanego rekombinowanego czynnika tkankowego, aby przeliczyć generację czynnika 10a w każdym dołku. Następnie oblicz zależne od czynnika tkankowego pokolenie czynnika 10a. Sześciu z 11 dawców miało średnią lub wysoką odpowiedź na lipopolisacharydy, podczas gdy pięciu z 11 dawców miało niską odpowiedź na lipopolisacharydy.
Wyświetl pełny transkrypt i uzyskaj dostęp do tysięcy filmów naukowych
W niniejszym artykule przedstawiono opracowany wewnętrznie test do pomiaru aktywności czynnika tkankowego w pęcherzykach zewnątrzkomórkowych pochodzących z ludzkiej osocza. Test ten wykazuje wyższą czułość i swoistość w porównaniu z tradycyjnymi metodami opartymi na wykrywaniu antygenów.
Dokładne ilościowe oznaczenie aktywności czynnika tkankowego w pęcherzykach zewnątrzkomórkowych jest kluczowe dla minimalizacji ryzyka zakrzepowego oraz zrozumienia koagulopatii związanych z chorobami w początkowej fazie odkrywania leków. Opisany test oparty na aktywności umożliwia czułą i specyficzną detekcję EV wykazujących obecność TF, co wspiera mechanistyczną walidację celu oraz selekcję projektów w obszarach terapeutycznych, w których zaangażowane są szlaki krzepnięcia. Możliwość ta zwiększa pewność predykcyjną na styku biologii odkrywczej i badań translacyjnych.
Ten test aktywności wpisuje się w proces od odkrywania leku do badań przedklinicznych, umożliwiając testowanie hipotez, walidację celów terapeutycznych oraz dopasowanie biomarkerów translacyjnych w programach związanych z krzepnięciem krwi.