10 сентября 2012 г.
Эффективный подход к подготовке нановолокон, украшенные функциональные группы, способные специфически взаимодействует с белками описано. Этот подход требует, прежде всего подготовка полимер, функционализированный с соответствующими функциональной группы. Функциональный полимер изготовлен в нановолокон по электропрядения. Эффективность связывания нановолокон с белком изучается с помощью конфокальной микроскопии.
Общая цель данной процедуры заключается в получении нановолокон, декорированных функциональными группами. Сначала синтезируют блок-сополимер метоксистирола и оксида этилена посредством анионной полимеризации и характеризуют его методом протонного ЯМР-спектроскопии. Затем с помощью электроспиннинга из раствора функционального полимера и одностенных нанотрубок создают композитное нановолокно.
Затем определите вольтамперные характеристики нановолокон после их воздействия белком IgE. В конечном итоге сочетание ANI и живой полимеризации с электроспиннингом позволяет создавать нановолокна, декорированные функциональными группами, способными связываться со специфическими белками. В данном подходе к изготовлению биофункциональных нановолокон живая полимеризация обеспечивает простой синтез биофункциональных полимеров с контролируемой молекулярной массой. Далее метод электроспиннинга позволяет получать нановолокна, декорированные функциональными группами, которые могут специфически взаимодействовать с белками.
Данный метод может дать ценную информацию для медицинской диагностики. Его также можно применить в других системах, например, для мониторинга любой выбранной отдельной молекулы в окружающей среде путем внедрения функциональных нановолокон в одежду, автомобили и так далее. Для синтеза Can I Poly требуются крайне строгие условия. Данное видео поможет вам освоить манипуляции, необходимые для синтеза полимера и его последующей переработки в нановолокно. Используя бензофенон в качестве индикатора, дегидратируйте 200 milliliters тетрагидрофурана над металлическим натрием в среде сухого азота.
Также высушите 10 миллилитров 2-метоксистирола над гидридом кальция в течение 24 часов для использования в реакторе полимеризации. Для проведения данной реакции подготовьте охлаждающую баню с температурой -78 °C, используя смесь изопропанола и жидкого азота.
Соберите установку, состоящую из круглодонной одногорлой колбы объемом 100 milliliter со стандартным конусным шлифом, двух адаптеров управления потоком с кранами и одной тефлоновой перемешивающей палочки по всему пути потока реагентов. Для обеспечения инертности системы используйте азот сверхвысокой чистоты.
Добавьте 25 µL THF в колбу для реакции полимеризации. Затем добавьте два миллилитра раствора инициатора. Далее введите четыре миллилитра первого мономера и оставьте реакцию протекать в течение 40 минут.
Теперь добавьте один миллилитр второго мономера для полимеризации при комнатной температуре в течение двух дней, затем остановите полимеризацию с помощью шестимолярной соляной кислоты и метанола. Для очистки полимера осадите его в гексанах и высушите в вакуумном шкафу, после чего приступайте к определению характеристик полимера с помощью ЯМР. Поместите реагенты для сочетания в трехгорлую колбу и высушите на вакуумной линии в течение четырех часов.
Затем введите в колбу под азотом 10 milliliter сухого дихлорэтана. Перемешивайте реакционную смесь в течение 12 часов при комнатной температуре.
Профильтруйте реакционную смесь, дважды промыв полимерный осадок гексанами и метанолом, затем высушите осажденный полимер в вакуумном шкафу при 40 °C. В завершение определите структуру и функциональность полимера с помощью ИК-фурье-спектроскопии и ¹H ЯМР. Растворите 20% функционального полимера в хлорбензоле.
Теперь приготовьте два раствора полистирола в хлорбензоле. Полистирол с более высокой молекулярной массой используется для улучшения переплетения полимерных цепей и получения оптимальной вязкости, необходимой для электроспиннинга. Смешайте полимерные растворы для получения соотношений полимеров один к одному и один к двум.
Затем добавьте в смесь 1% одностенных углеродных нанотрубок и перемешивайте в течение ночи. Соберите установку для электроспиннинга, используя высоковольтный источник питания Glassman, кремниевую подложку, шприц или химический шприцевой насос, а также лампу для визуализации процесса. По мере готовности наберите небольшое количество раствора полимера с одностенными углеродными нанотрубками в гиподермический шприц и установите шприц в держатель.
Теперь прикрепите зажим с высоким напряжением к игле шприца. Чтобы начать процесс электроспиннинга, включите источник высокого напряжения и установите значение на вольтметре на 10 kilovolts. Затем начните плавно нажимать на поршень шприца.
В зависимости от природы полимеров в композите может потребоваться более высокое напряжение, особенно если целью является получение нановолокон размером менее 100 нм. Извлеките кремниевую пластину и полностью высушите ее в эксикаторе в течение ночи. Чтобы оценить общий вид нановолокон, сначала получите изображение с помощью оптического микроскопа.
Затем используйте сканирующий электронный микроскоп для изучения более мелких деталей, таких как морфология, диаметр и средний размер пор. Дальнейшая визуализация с помощью атомно-силового микроскопа позволяет исследовать трехмерную топографию нановолокон. Поместите небольшой фрагмент кремниевой пластины с нановолокнами на подложку Mat Tech.
Накройте покровным стеклом. Добавьте 10 µL флуоресцентно меченного антитела и инкубируйте в течение одного часа; промойте трижды раствором P-B-S-B-S-A, осторожно нанося раствор на стенку чашки MatTek, аккуратно перемешивая содержимое чашки вручную, а затем удаляя буфер пипеткой для наблюдения за связыванием с IgE. Визуализацию волокон проводят с помощью конфокальной микроскопии.
Типичная зондовая станция, используемая для определения исходных вольтамперных характеристик нановолокон, состоит из микроскопа ABOs и lo micro zoomo, вакуумного предметного столика для микропозиционеров, мультиметра для измерения напряжения и источника-измерителя для подачи малых токов на волокна. Сначала подключите два микропозиционера к источнику очень малого тока и установите зонды микропозиционеров над матом из волокон с противоположных сторон так, чтобы их кончики касались волокон. Затем подключите еще два микропозиционера к цифровому мультиметру.
Установите плечи зонда между двумя другими и опустите наконечники на волокнистый мат. Убедитесь, что четыре наконечника расположены максимально коллинеарно. Подавайте ток различной силы, обычно в диапазоне наноампер.
Теперь измерьте падение напряжения на внешних контактах для каждого значения подаваемого тока. Затем постройте вольтамперные характеристики и определите тип устройства, которое представляет собой волокнистый мат. В данном методе функциональный полимер DNP синтезируют методом ионной живой полимеризации.
Функциональный инициатор D, используемый в полимеризации, получают с помощью реакции переноса электрона. В процессе к инициатору добавляют первый мономер — два метоксистирола, а затем второй мономер — оксид этилена. В завершение реакцию живой полимеризации останавливают добавлением метанола.
Структура функционального полимера подтверждается методами ИК-фурье-спектроскопии и ЯМР-спектроскопии. ИК-фурье-спектр демонстрирует полное исчезновение широкой полосы поглощения группы OH, что указывает на количественную функционализацию группой CDNP. Интегрирование пиков в ЯМР-спектре подтверждает количественную функционализацию полимеров.
Затем полимеры функционализируют с помощью DCC-сшивки для включения функциональных фрагментов DNP в этот слой проводящих нановолокон; специфичность связывания электроспиннинговых DNP-полимеров с антителами IgE подтверждают с помощью флуоресценции. Обычно размеры нановолокон определяют по изображению, полученному с помощью атомно-силового микроскопа. Снимки СЭМ показывают, что данные волокна имеют линейную и бусинообразную морфологию.
Общая цель состоит в подготовке преимущественно линейных волокон. График зависимости тока от напряжения для матов из нановолокон демонстрирует омическое поведение резистора при связывании антигена с нановолокнами. Изменение сопротивления указывает на то, что функционализированные волокна могут быть применены в качестве активного компонента в сенсорах для детектирования единичных молекул.
Работа с такими растворителями, как тетрагидрофуран, дихлорметан, хлорбензол и диметилсульфоксид, может быть крайне опасной, поэтому необходимо принять соответствующие меры предосторожности. Данный подход может быть реализован за пять дней, что включает синтез и характеристику полимера, а также изготовление и характеристику нановолокон.
При выполнении данной процедуры важно помнить, что анионная полимеризация чувствительна к примесям в продуктах. Надеюсь, вам понравилось видео, и желаю успехов в экспериментах.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье описывается эффективный метод получения нановолокон, декорированных функциональными группами для специфического взаимодействия с белками. Процесс включает синтез функционализированного полимера и его переработку в нановолокна методом электроспиннинга с последующим изучением эффективности связывания с белками.
Биофункциональные нановолокна, изготовленные с помощью контролируемой полимеризации и электроспиннинга, позволяют проводить точный анализ взаимодействий между материалом и биомаркером, что способствует разработке биосенсоров следующего поколения. Эта возможность повышает прогностическую достоверность на ранних этапах поиска за счет создания платформы для специфического детектирования белков и снижения механистических рисков. Интеграция таких систем нановолокон в процессы исследований и разработок может ускорить трансляционную валидацию биомаркеров и помочь в принятии решений по формированию портфеля проектов с учетом рисков.
Данный метод изготовления нановолокон находится на стыке этапов первичного поиска и разработки анализа, обеспечивая переход от проверки гипотез к количественному скринингу и трансляционным исследованиям.