الأسلوب MODS لتشخيص السل والسل المقاوم للأدوية المتعددة

يُصاب شخص واحد من بين كل ثلاثة أشخاص في العالم بمرض السل. ويساهم تشخيص السل النشط في منع الإصابات الجديدة، لأن المرضى الذين يعانون من السل النشط سيقومون بنقل العدوى ما بين 10 و15 شخصاً آخر في السنة حتى يتم علاجهم أو وفاتهم. "Mods" هو اختصار نستخدمه لتجنب تكرار قول "الفحص المجهري"، و"اختبار الحساسية الدوائية"، وسيصبح السبب وراء هذه التسمية واضحاً عند شرح المنهجية.

سوف نستعرض في هذا الفيديو القصير منهجية mods للتشخيص السريع ومنخفض التكلفة لمرض السل والسل المقاوم للأدوية المتعددة. سيعرض الفيديو المنهجية خطوة بخطوة، كما سنناقش الآثار المترتبة على السلامة البيولوجية عند التعامل مع المزارع السائلة، وسنوضح أيضاً بعض القضايا الهامة المتعلقة بضمان الجودة والمطلوبة لاستخدام هذه المنهجية.

تم تطوير مقايسة mods في جامعة كايانا في ليما، بيرو، في مختبر Bob Gilman. وجاء ذلك بناءً على ملاحظات أجراها في البداية loose cavi. حيث كان LOOSE يحاول تحديد طرق سريعة للكشف عن mycobacterium tuberculosis في المزارع المخبرية باستخدام المؤشرات اللونية.

لكنها أشارت إلى أن فحص تلك المزارع تحت المجهر كشف عن وجود نمو للبكتيريا الدقيقة قبل عدة أيام من تغير لون المؤشرات اللونية، وبناءً على هذه الملاحظة تم تطوير تحليل MOD. لقد تم تطوير تحليل MOD في بيئة محدودة الموارد وهو موجه للبيئات محدودة الموارد، لذا فإن تكلفته تقل عن 3 لكل اختبار للكشف عن مرض السل ومقاومة الأدوية المتعددة بناءً على المزارع السائلة. إن هذا الأمر جذاب للغاية، فهو يوفر لأول مرة هذا النوع من القدرة التشخيصية في الأماكن التي تتوفر فيها موارد محدودة.

تعتمد مقايسة MODS على ثلاثة مبادئ أساسية. الأول هو أن بكتيريا Mycobacterium tuberculosis تنمو في الأوساط السائلة بشكل أسرع بكثير مما تنمو فيه في الأوساط الصلبة. وهذه حقيقة معروفة منذ سنوات عديدة.

ثانياً، إذا فحصنا هذه الأوساط السائلة تحت المجهر، يمكننا اكتشاف نمو *M tuberculosis* بشكل أسرع بكثير من انتظار الظهور العياني للمستعمرات على الأوساط الصلبة. وبالفعل، فإن هذا النمو مميز تماماً بحيث يمكننا تمييز *M tuberculosis* في الأوساط السائلة عن التلوث البكتيري أو الفطري، أو حتى عن نمو المتفطرات غير السلية غير النمطية التي قد تكون موجودة. وأخيراً، وهذا ربما يكون الأمر الأكثر إثارة في مقايسة MGIT، هو أنه يمكننا دمج الأدوية مثل rifampicin وبالتالي تحديد المقاومة المتعددة للأدوية مباشرة من البلغم.

من خلال استخدام هذه الأدوية في بداية المقايسة، يمكننا الكشف عن مرض السل وفي الوقت ذاته معرفة ما إذا كانت العزلة مقاومة لهذين الدوائين أم لا. وهذا يلغي الحاجة إلى الاستزراع الفرعي وإجراء اختبار غير مباشر للحساسية الدوائية. والآن سنقوم بتوضيح المعدات المطلوبة لإجراء مقايسة mods.

تُستخدم الثلاجة لتخزين الأوساط الزرعية المُحضرة. ويُستخدم الميزان لوزن المواد والـ Rifampin. كما يُستخدم جهاز الـ vortex لخلط عينة البلغم.

مع استخدام محلول إزالة التلوث، يلزم وجود جهاز طرد مركزي لتركيز عينة البلغم المزال منها التلوث، ويجب أن يكون الجهاز قادراً على الوصول إلى 3000 G. لا يشترط أن يكون جهاز الطرد المركزي مبرداً، ولكن من الضروري جداً أن يكون آمناً بيولوجياً. وبالنسبة للعمل على المتفطرات، يشترط أن تكون سلالات جهاز الطرد المركزي قابلة للإغلاق بأغطية محكمة. كما يلزم توفر حاضنة يمكنها الوصول إلى 37 درجة مئوية والحفاظ عليها.

لا يشترط أن تكون هذه البيئة غنية بـ CO2. يلزم وجود مجهر مقلوب لقراءة أطباق التعديلات، ويجب أن يحتوي على عدسات شيئية بقوة 4x و 10x، كما يلزم وجود جهاز تعقيم (autoclave) لتعقيم الأوساط الغذائية وكذلك للتخلص من المزارع البكتيرية. وتُستخدم الماصات الدقيقة لنقل الأجزاء المحددة من الأوساط الغذائية، بالإضافة إلى خزانة سلامة بيولوجية من الفئة الثانية للإجراءات التي تتضمن التعامل مع عينات البلغم وتلقيح الأطباق.

تتمثل الكواشف المطلوبة لإجراء مقايسة mods فيما يلي: وسط Middlebrook 7H9، والكاسيتون والجلسرول، والمكمل المضاد للميكروبات Panta، والمكمل الغذائي OADC. وتتكون مخزونات المضادات الحيوية من Rifampin، وثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) لتحضير الـ rifampicin، وهيدروكسيد الصوديوم، وسترات الصوديوم، و-N-acetyl-L-cysteine لإزالة تلوث البلغم، وفوسفات ثنائي الصوديوم وفوسفات أحادي البوتاسيوم لتحضير محلول الفوسفات المنظم، وهيبوكلوريت الصوديوم بتركيز 10% للتخلص من النفايات المعدية، ومطهر لتنظيف أسطح العمل. كما يلزم توفير المواد البلاستيكية والمستهلكات التالية: أنابيب زجاجية معقمة، ومرشحات 0.2 µm للمذيبات المائية، ومرشحات 0.2 µm للمذيبات العضوية، وأنابيب طرد مركزي دقيقة (micro centrifuge tubes)، وأنابيب طرد مركزي سعة 15 mL، وماصات سيرولوجية معقمة سعة 50 mL و10 mL، ورؤوس ماصات دقيقة معقمة، وأطباق زراعة أنسجة تحتوي على 24 بئراً، وأكياس Ziploc قابلة للإغلاق توضع فيها أطباق الـ 24 بئراً بعد تلقيح عينة البلغم في الوسط الزرعي.

هناك أربع مجموعات من المحاليل القياسية التي يمكن تحضيرها مسبقاً. يتكون محلول منظم الفوسفات من مزيج من محاليل فوسفات الصوديوم ثنائية القاعدة وفوسفات البوتاسيوم أحادية القاعدة المعدلة لتصل قيمة الـ pH إلى 6.8 ± 0.2. يتم تعقيم هذا المحلول بجهاز الموصدة (autoclaved) عند درجة حرارة 121 إلى 124 °C لمدة 15 دقيقة، وتُزرع عينة منه على أغار مغذٍ للتأكد من التعقيم.

يمكن تخزين هذا في الثلاجة في درجة حرارة من 2 إلى 8 °C لمدة تصل إلى شهر واحد. تتطلب كل عينة بلغم 10 mL من محلول منظم الفوسفات. أما المحلول المخزون لإزالة تلوث البلغم فهو مزيج من هيدروكسيد الصوديوم وسترات الصوديوم.

يتم دمج هذه المحاليل بأحجام متساوية وتعقيمها باستخدام الموصدة (autoclave) عند 121 إلى 124 °C لمدة 15 دقيقة، كما يمكن تخزينها في الثلاجة عند درجتي حرارة من 2 إلى 8 °C لمدة تصل إلى شهر واحد. يتطلب كل عينة بلغم 2 mL من هذا المحلول. يتكون وسط الزرع الأساسي من Middlebrook 7H9 مع الكازيون (cascione) والجلسرين.

يُذاب مسحوق 7H9 في ماء مقطر معقم يحتوي على الجلسرول والكازيون، ويُخلط مع التقليب المستمر حتى الذوبان التام. يتم تعقيم هذا الوسط في الموصدة (autoclave) عند درجة حرارة 121 إلى 124 °C لمدة 15 دقيقة، وبعد التبريد يُقسم إلى حصص بحجم 4.5 mL في أنابيب زجاجية معقمة مقاس 16 × 100 mm. يُحضن الوسط عند درجة حرارة 37 °C لمدة 48 ساعة للتحقق من العقامة، والتي يُستدل عليها بعدم وجود عكر بعد مرور هذا الوقت، ويمكن تخزينه في درجة حرارة من 2 إلى 8 °C مع إغلاق الغطاء بإحكام لمدة تصل إلى شهر واحد.

تتطلب كل عينة بلغم أنبوباً واحداً يحتوي على 4.5 milliliters من هذه المزرعة. يتم تحضير المحاليل المخزنة للمضادات الحيوية في الوسط الغذائي على النحو التالي: تُذاب تماماً في ماء مقطر معقم وتُرشح باستخدام مرشح حقنة بمقاس 0.2 micrometer للمذيبات المائية. يمكن بعد ذلك تخزين حصص مقدارها 20 microliter في أنابيب طرد مركزي دقيقة معقمة عند درجة حرارة minus 20 degrees centigrade لمدة تصل إلى ستة أشهر، وتكفي كل حصة سعة 20 microliter لما يصل إلى مائة عينة.

يتم تحضير المحاليل المخزونة من Rifampin بتركيز 8 mg/mL عن طريق إذابة rifampicin في DMSO ومياه مقطرة معقمة. يُرشح هذا الخليط باستخدام مرشح سرنجة بمسامية 0.2 µm مخصص للمذيبات العضوية، ويمكن تخزين المحلول في أنابيب طرد مركزي دقيقة معقمة على هيئة حصص حجم كل منها 20 µL عند درجة حرارة -20 °C لمدة تصل إلى ستة أشهر، وتكفي كل حصة حجمها 20 µL لما يصل إلى 100 عينة. ننتقل الآن إلى جزء المنهجية والخطوات الثلاث التي يجب اتباعها في يوم إجراء التجربة.

تتم هنا عملية تحويل المحاليل الأم إلى محاليل عمل. نبدأ بمحلول التطهير، ثم محلول الوسط الغذائي، وأخيراً محاليل العمل للأدوية isen وRifampin.

إن طريقة التطهير المستخدمة في منهجية mods هي منهجية التطهير القياسية باستخدام هيدروكسيد الصوديوم وnalk. ويعد nalk مادة مذيبة للمخاط، مما يساعد على هضم البلغم والسماح لهيدروكسيد الصوديوم بإجراء عملية التطهير. ولتحقيق ذلك، نحتاج إلى المحلول المخزون من هيدروكسيد الصوديوم وسترات الصوديوم، ويتم إضافة 0.1 grams من NA إلى 20 mls من ذلك المحلول.

يجب التخلص من أي محلول لا يتم استخدامه في يوم تحضيره. كما يجب إتمام التحضير النهائي للوسط الزراعي في يوم الاستخدام فقط. يتم دمج أوساط 7H9 المخزنة مع OADC وPanta، حيث يضاف 4.5 milliliters من الوسط إلى 0.5 milliliters من OADC و0.1 milliliters من Panta في كل أنبوب.

تعتبر هذه الكمية كافية لعينة واحدة. يتم تحضير المحاليل العاملة لكل عقار في يوم الاستخدام، ويجب التخلص من أي محاليل غير مستخدمة لأنه لا يمكن ضمان فعاليتها. يتم تخفيف الحصص المخزنة تسلسلياً في أطباق زراعة الأنسجة ذات 24 بئراً باستخدام وسط 7H9 OADC، بحيث يكون التركيز النهائي في البئر الذي يتم تحقيقه بعد إضافة عينة البلغم مع الوسط هو 0.4 µg/mL لحمض الفوريك و 1 µg/mL للريفامبين.

ننتقل الآن إلى إجراء التطهير، حيث يتم وضع 2 mL من عينة البلغم في أنبوب Falcon بقاعدة مخروطية، ثم يُضاف 2 mL من محلول التطهير المكون من هيدروكسيد الصوديوم. يُعاد تركيب الغطاء ويُغلق بإحكام، وبعد ذلك يتم رج المعلق باستخدام جهاز vortex ويُترك لمدة 15 دقيقة، وهي الفترة التي تتم خلالها عملية التطهير. وبعد مرور هذا الوقت، يُضاف 14 mL من محلول الفوسفات المنظم.

يُعاد تركيب الغطاء ويُربط بإحكام، ثم يُوضع الأنبوب في جهاز الطرد المركزي. بعد 50 دقيقة عند 3000 G، يتم سكب supernatant S، وتكون الرواسب المتبقية هي العينة التي نرغب في توزيعها في أطباق باستخدام أنابيب 5.1 milliliter من seven H nine OEDC panter. يتم إعادة تعليق الرواسب لدينا إلى حجم يصل تقريباً إلى two milliliters. ويُخزن نصف هذه العينة المعاد تعليقها كنسخة احتياطية في أنبوب طرد مركزي دقيق.

يكون هذا متاحاً في حال تلوث المزرعة واحتجنا إلى إعادة توزيع العينة على الأطباق مرة أخرى. يُضاف المليلتر الآخر إلى السبعة H nine oh a DC panter المتبقية في الأنبوب الزجاجي، وبذلك تصبح هذه العينة جاهزة للتوزيع على الأطباق. يتم وضع 900 µL من هذا المعلق المكون من الوسط والعينة في كل بئر من الآبار الأربعة الموجودة في عمود واحد من طبق يحتوي على 24 بئراً.

تُملأ الآبار المتبقية في طبق الـ 24 بئرًا بالعينات التالية، بحيث يملأ خمس عينات طبق الـ 24 بئرًا، عينة واحدة لكل عمود من الأعمدة الخمسة، ويُترك العمود السادس بدون عينة. يعمل العمود السادس كضابط سلبي في هذا العمود؛ حيث يتم وضع جميع مكونات الوسط الغذائي بدون عينة بلغم، ومن الواضح أن أي نمو في هذا العمود يشير إلى وجود مشكلة في التلوث الخلطي، مما يستوجب التخلص من الطبق بالكامل.

تتطلب كل صفيحة نستخدمها عموداً من الضوابط السالبة. والآن، لدينا الصفيحة التي تحتوي على جميع العينات والأوساط الغذائية. ويتوجب علينا إضافة معلقات المضادات الحيوية في صفيحة منفصلة.

لقد قمنا بتحضير تخفيفات Rifampin وIsid كما تم وصفه سابقاً، وباستخدام ماصة متعددة القنوات بأربع قنوات، نجمع 100 µL من كل بئر من هذه الآبار ونوزع 100 µL من 7H9 OADC في كل بئر من بئري التحكم، و100 µL من Rifampin و100 µL من isid في كل بئر من البئرَين المحتويين على العقاقير. وبمجرد اكتمال ملء الطبق، يتم وضع الغطاء وإدخاله داخل كيس Ziploc؛ ومن هذه النقطة فصاعداً لا يتم فتح الكيس مرة أخرى، وبالتالي، فإن أي مستنبتات تنمو في الأوساط السائلة لا تتاح لها الفرصة أبداً للخروج من الكيس.

تتم جميع قراءات الطبق من الآن فصاعداً داخل الكيس، ثم يوضع الكيس في كيس تعقيم (autoclave bag) ويتم التخلص منه في نهاية عملية الزرع. وبهذه الطريقة، نتجنب التعامل المباشر مع معلقات عالية التركيز من المتفطرات (mycobacteria). وسنتطرق الآن بكلمات موجزة إلى مراقبة الجودة.

توجد ضوابط جودة مدمجة في منهجية mods، وهي ضرورية للاستخدام الصحيح للمقايسة. أولاً، هناك الضوابط السلبية التي يتم تشغيلها في كل لوحة على حدة. لقد تم ذكر هذه الضوابط سابقاً، ولكن باختصار، لدينا عمود يحتوي على جميع مكونات الوسط الغذائي دون وجود عينة بلغم إلى جانب خمس عينات بلغم أخرى في اللوحة؛ ويجب فحص الآبار الموجودة في هذا العمود تماماً مثل أي آبار أخرى، ويشير وجود أي نمو في هذه الآبار إلى حدوث تلوث خلطي، وبالتالي لا يمكن الوثوق بأي من النتائج الموجودة على اللوحة.

وبناءً على ذلك، يجب التخلص من الطبق وإعادة توزيع جميع العينات في أطباق جديدة. بالإضافة إلى ذلك، توجد ضوابط داخلية تعمل كضوابط إيجابية؛ حيث يتم تشغيلها في طبق منفصل، ويُجهز هذا الطبق بعد تجهيز جميع أطباق العينات الأخرى في نهاية اليوم لتقليل مخاطر التلوث الخلطي داخل المختبر.

في هذا الطبق المنفصل، نستخدم سلالة واحدة من mycobacterium tuberculosis حساسة تماماً، وسلالة أخرى مقاومة لـ isid والريفامبيسين (rifampicin). وفي حال وجود مخاوف بشأن استخدام سلالة مقاومة لعدة أدوية على الطبق، يمكن استخدام سلالة مقاومة للريفامبين (rifampin) بمفرده وسلالة مقاومة لـ is بمفرده بدلاً من هاتين السلالتين (الحساسة والمقاومة لعدة أدوية). والغرض من هذه السلالات هو إثبات أن الوسط الغذائي يدعم النمو، ولذا يجب أن تظهر جميع ضوابطنا الإيجابية نمواً في الوسط الخالي من الأدوية، وأيضاً إثبات أن تركيزات الأدوية صحيحة، وبالتالي يجب ألا تنمو الضوابط الإيجابية الحساسة في وجود is والريفامبين، بينما يجب أن تنمو الضوابط الإيجابية المقاومة بشكل واضح رغم تركيزات الريفامبين و is الموجودة في الطبق.

حسناً، ننتقل الآن إلى قراءة الأطباق. إذا اعتبرنا يوم توزيع العينات من أجهزة أخذ العينات هو اليوم صفر، فإن قراءة الأطباق تبدأ في اليوم الخامس. وقبل ذلك، نادراً ما يُلاحظ نمو المتفطرات.

يتم فحص الأطباق باستخدام مجهر ضوئي مقلوب. وهذا يعني أن الأطباق تُفحص من الأسفل إلى الأعلى، مما يتيح لنا رؤية الحبال بوضوح شديد؛ حيث إن محاولة معاينة المزارع من الأعلى تعيقها التكثيفات الموجودة على غطاء الأطباق، وأيضاً لأن البعد البؤري للمجهر القياسي غير كافٍ. يُجرى الفحص المجهري عموماً باستخدام عدسة شيئية 10x، وتُعتبر المزارع إيجابية إذا كان هناك وحدتان على الأقل من الوحدات المكونة للمستعمرات في كلا البئرين الخاليين من العقاقير.

يمكن تمييز وجود التلوث بسهولة لأن الوسط يصبح عكراً، وبحلول اليوم الخامس يحدث عادةً نمو مفرط يغطي معظم البئر. وفي المقابل، لا يؤدي نمو المتفطرات إلى تعكر البئر؛ حيث تتخذ البدايات الأولى لنمو المتفطرات أشكالاً صغيرة تشبه الفواصل، والتي تتطور تدريجياً لتشكل حبالاً أو تشابكات مميزة. وفي غضون أسبوعين، سيؤدي النمو الإيجابي القوي إلى تكوين تجمعات من المتفطرات بحيث لا تكون الحبال مرئية حقاً إلا عند الأطراف.

تصبح الغالبية العظمى من المزارع التي ستظهر نتيجة إيجابية إيجابية بحلول اليوم 14، وبناءً على ذلك، نوصي بإجراء قراءات يومية من اليوم الخامس إلى اليوم 14، ومن ثم إجراء القراءات كل يومين أو ثلاثة أيام وفقاً لضغط العمل في المختبر. في اليوم الذي تظهر فيه المزرعة إيجابية بشكل واضح في البئرين الخاليين من الدواء، يجب قراءة الآبار المحتوية على الدواء. يشير أي نمو في وجود أي من الدوائين إلى وجود مقاومة لهذا الدواء. ومن المهم جداً ملاحظة أنه إذا تم فحص منطقة الآبار المحتوية على الدواء بعد أكثر من أسبوع من ملاحظة مزرعة إيجابية في الآبار الخالية من الدواء، فقد لا يمثل ذلك مقاومة، حيث يُلاحظ أحياناً حدوث نمو اختراقي.

يمكن إيقاف القراءات في اليوم 21 إذا كانت المزرعة سلبية، حيث لا يتم مواجهة مزارع إيجابية بعد هذا الوقت في المرضى الذين لا يتلقون علاجاً. وعند اكتمال 21 يوماً من الحضن، يمكن التخلص من المزارع. تبقى المزارع داخل أكياس Ziploc الخاصة بها وتوضع في أكياس التعقيم (autoclave bags) وتُعقم في جهاز الأوتوكلاف عند درجة حرارة 121 إلى 124 درجة مئوية لمدة 45 إلى 60 دقيقة، وبعد ذلك يمكن التخلص منها بأمان. سأقول الآن كلمات قليلة عن السلامة البيولوجية ومقايسة MODS، حيث بدأنا في تطبيق MODS ليس في بيرو فحسب، بل وأيضاً في بيئات في أفريقيا وآسيا.

يطرح سؤال متكرر حول الأمان والسلامة البيولوجية لاستخدام مزارع المتفطرات في الأوساط السائلة. وهذا خوف مفهوم لأن السوائل يمكن أن تنسكب بوضوح بينما لا تحمل الأوساط الصلبة هذا الخطر، كما أن هناك خطراً من تكوّن الهباء الجوي عند التعامل مع معلقات المتفطرات. وفي الواقع، وبسبب هذه الأسباب ذاتها، نعتقد أن منهجية mod هي منهجية أكثر أماناً من أي منهجية تتطلب اختبار حساسية الأدوية غير المباشر.

يعود السبب في ذلك إلى أنه في اختبار الحساسية غير المباشر، يتم تحضير معلق بتركيز معروف من البكتيريا الدقيقة. وهذا يتطلب بالتالي التعامل مع محاليل عالية التركيز من البكتيريا الدقيقة، مع ما يصاحب ذلك من مخاطر الانسكاب وتكون الرذاذ الجوي. وفي المقابل، فإن منهجية mods، كما رأيتم الآن، تتضمن ببساطة تلقيح عينة من البلغم في الطبق الخاص بنا، وبعد ذلك يتم إغلاق الطبق بإحكام داخل كيس بلاستيكي.

لا يتم فتح هذا الكيس مرة أخرى، وبالتالي لا نضطر للتعامل مع هذه المعلقات عالية التركيز. ولا يعني هذا أننا نعتقد أن منهجية MOD آمنة تمامًا، فالمناولة الدائمة للمتفطرات تنطوي دائمًا على مخاطر. ومع ذلك، يبدو أن البيانات المنشورة من كوريا في عام 2006 قد أيدت موقفنا بأن طريقة MOD ليست أكثر خطورة من زراعة أي مستنبت آخر على الأطباق.

كانت هذه دراسة أجريت على العاملين في المختبرات، وأظهرت أن المخاطر المهنية التي يتعرض لها موظفو المختبرات الذين يقومون بنشر المزارع ولا تقع على عاتقهم مسؤولية اختبار الحساسية للأدوية ليست أكبر من تلك التي يتعرض لها من يقومون بفحص لطخة البلغم مجهرياً. وفي المقابل، فإن أولئك الذين يتعاملون مع معلقات المتفطرات ويجرون اختبارات الحساسية للأدوية لديهم معدلات أعلى بكثير من المخاطر المهنية للإصابة بالسل. ومن الواضح أنه من الأهمية بمكان حماية جميع كوادر المختبرات قدر الإمكان، ولذلك نوصي بشدة بعدم تنفيذ أي من هذه الإجراءات دون استخدام حماية تنفسية شخصية مناسبة، ونقصد بذلك الكمامات ذات معيار N95.

بالإضافة إلى ذلك، يلزم توفير كابينة سلامة بيولوجية أو غطاء من الفئة الثانية تكون فيه جميع مناطق العادم مصفاة عبر مرشحات HEPA. وأخيرًا، هناك آلية بسيطة ومهمة جدًا لتجنب اضطراب تدفق الهواء داخل المختبر، وهي وضع قفل على باب المختبر لمنع دخول وخروج الموظفين أثناء معالجة العينات؛ حيث يقلل ذلك من خطر انتقال العدوى داخل المختبر. لذا، آمل أن يكون هذا قد قدم لكم نظرة عامة جيدة على ما تتضمنه منهجية MODS ومدى فائدتها في البيئات ذات الموارد المحدودة، ولكنها تتطلب تشخيصات عالية الجودة لمرض السل والسل المقاوم للأدوية المتعددة (MDR TB) بشكل عاجل.

للمزيد من المعلومات، يمكنك زيارة موقعنا الإلكتروني mods peru. org، حيث ستجد إجراءات التشغيل القياسية التفصيلية ودليل المستخدم الخاص بـ mods. وبالإضافة إلى إجراءات التشغيل القياسية لمعالجة العينات خارج الرئة، لدينا أيضاً مكتبة صور لـ mycobacterium and tuberculosis، وأنواع أخرى من mycobacteria، والتلوث البكتيري والفطري، كما يمكنك أيضاً العثور على استراتيجية ضمان الجودة لدينا والإجراء الذي نوصي به لاعتماد المختبرات للبدء في استخدام mods.

أخيراً، توجد ورقة للأسئلة الشائعة، ونرحب بأي ملاحظات من المستخدمين الذين يستخدمون التعديلات حالياً، حيث إن هذه المنهجية تكرارية. وكما أوضحنا سابقاً، فإن هذا الاختبار غير حاصل على براءة اختراع، ونحن مهتمون دائماً بالتحسينات التي تمكنت المختبرات الأخرى من تحقيقها.