$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
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以革兰氏阴性菌的总膜组分开始,包括内膜和外膜囊泡,将其悬浮于低密度蔗糖溶液中以保持其结构完整性。
为了分离膜囊泡,依次将高密度和中密度的蔗糖溶液加入超速离心管中。
接下来,加入膜组分和低密度蔗糖,以形成不连续的蔗糖梯度。
使用超速离心机根据囊泡的密度进行分离。
密度较低的内膜小泡在顶部形成一层。
富含脂多糖和蛋白质的较致密外膜囊泡在中等与高密度蔗糖溶液的界面处形成条带。
收集内膜层,弃去梯度溶液,但保留少量。
然后,收集外膜层。
向每份组分中加入储存缓冲液以进行稳定。
离心以分离囊泡,并移除上清液。
重悬纯化的膜囊泡,混匀后于低温保存,以备后续分析。
制备蔗糖梯度时,将聚丙烯或超透明开口管置于略微倾斜的位置。
缓慢加入两毫升高密度蔗糖溶液。然后加入四毫升低密度蔗糖溶液。制备密度梯度时,应缓慢加入蔗糖溶液,以避免各层混合。
蔗糖层应略微可见,且整体界限清晰。接下来,加入先前用1 mL低密度等密度蔗糖溶液重悬的全部膜组分。最后,加入约6 mL低密度等密度蔗糖梯度溶液,补满离心管的剩余部分。
使用水平转子在 288,000 × g 和 4°C 条件下对样品进行超速离心,离心时间为 16 至 23 小时。从 P1000 移液枪吸头尖端起约五毫米处剪去末端。离心完成后,用移液枪小心移除管中上层的棕色层。
将含有内膜组分的这一层转移至一个聚碳酸酯瓶中,用于超速离心。在53%蔗糖与73%蔗糖界面之上保留约两毫升蔗糖溶液,以确保下方白色的外膜组分不会污染内膜组分。再次使用剪去末端的P1000移液枪头,移除外膜层,并将其转移至另一聚碳酸酯瓶中。
用分离的膜储存缓冲液填满聚碳酸酯瓶中的剩余空间,并通过倒置或移液混匀。将样品置于冰上保存。为收集膜,需在4°C条件下以184,500 × g超速离心聚碳酸酯瓶1小时。
最后,弃去上清液,加入 500 至 1,000 µL 储存缓冲液。通过 Dounce 匀浆器重悬膜组分,将样品收集至 2 mL 微量离心管中。