细菌外膜来源的胞外囊泡的分离与富集

0 次观看3:53 分钟 • September 26th, 2025

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首先将一株基因工程改造的细菌菌落接种到液体培养基中。

这些细菌在外膜(一种外部保护层)中表达一种荧光融合蛋白。

孵育细菌以释放细胞外囊泡(EVs),即参与细胞间通讯的膜结合纳米结构,其中包含荧光蛋白。

将培养物转移至离心管中,低速离心以沉淀细胞。

转移含有细胞外囊泡(EVs)、细胞蛋白和细胞碎片的上清液。高速离心后,弃去含有碎片的上清液。

通过膜过滤上清液,以去除任何残留的细菌和碎片。

在琼脂培养基上接种样品并进行培养。若无细菌菌落形成,则证实样品中无细菌存在。

将溶液转移至带有半透膜的超滤装置中,离心以截留细胞外囊泡(EVs),同时去除较小的蛋白质。

将浓缩的EVs收集到离心管中,用于后续分析。

首先,用无菌接种环将单个 Escherichia coli 菌落接种至 250 至 1000 毫升的 Luria-Bertani(LB)液体培养基中。然后,在 300 转/分钟、37 °C 条件下,将培养物于摇床培养箱中进行好氧培养。培养 48 小时后,将菌液转移至洁净的 500 毫升聚丙烯离心管中,于 4 °C、5,000 ×g 条件下,使用大容量固定角转子离心机离心 15 分钟,以澄清细菌培养液。

将上清液小心倾倒入干净的离心管中,于10,000 × g 离心15分钟。随后,将上清液转移至适当大小的0.2微米聚醚砜真空驱动滤器装置,并将过滤装置连接至真空壁式供气系统。若过滤速率显著下降,需将未过滤的样品转移至新的过滤装置中。

过滤后的培养基可在4°C下保存过夜,也可立即进行后续处理。为检测活细胞是否完全去除,取一份过滤后的上清液涂布于合适的琼脂平板上,在该细菌菌株最适培养条件下孵育后,确认无任何菌落生长。对于体积为100毫升的过滤培养基,将其90毫升加入截留分子量为100千道尔顿的离心超滤装置的储液室中,在4°C条件下,使用水平转子以2,000 × g离心15至30分钟为一个间隔,重复操作直至上层储液室中的培养基体积浓缩至小于0.5毫升。

将剩余的过滤培养基加入储液池以补充液量,并移除装置底部的流穿液以重新平衡。如果储液池中浓缩培养基的黏度明显增加,可用 PBS 稀释培养基,再通过离心重新浓缩,以去除分子量截断值低于 100 千道尔顿的非细胞外囊泡(EV)蛋白质。然后,将浓缩后的培养基转移至低蛋白结合管中,在 4 摄氏度下过夜保存。

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最后更新:22 八月 2026