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在骨再生过程中,成骨细胞(即骨形成细胞)被募集到骨折部位,在此处增殖并分泌类骨质(一种胶原基质)。经过一段成熟期后,成骨细胞通过有序沉积钙离子和磷酸盐离子使类骨质矿化,从而启动新骨的合成。
量化成骨细胞矿化程度 体外,用合适的培养基制备原代成骨细胞悬液。将细胞悬液接种至含有多孔骨移植替代材料圆片的多孔板中,并进行培养。
这些圆盘可作为支架,支持细胞黏附和增殖。
更换为含有成骨补充剂的新鲜培养基,长期孵育。成骨补充剂可刺激成骨细胞生成并进一步矿化胶原基质。
固定后,使用茜素红S(alizarin red S, ARS)溶液对矿化基质进行染色。ARS是一种带负电荷的染料,可与基质中带正电荷的钙离子结合,形成红色复合物。去除多余的染料后,对培养板成像,以检测红色钙沉积物,这些沉积物提示成骨细胞的矿化作用。
接下来,加入氯化十六烷基吡啶(CPC)溶液。CPC 是一种带正电荷的表面活性剂,以胶束形式存在时可形成复合物 通过 其头部基团与基质中带相反电荷的ARS结合钙离子,促进染料向溶液中的萃取。
收集溶液并进行离心。将含有CPC-染料复合物的上清液转移至多孔板中,使用酶标仪测定吸光度。
CPC-染料复合物的吸光度反映了基质中钙盐沉积的量,可用来评估成骨细胞矿化的程度。
将染色的β-磷酸三钙圆片转移至新的孔中,使用平板扫描仪扫描培养板以记录矿化情况。
成像完成后,加入 250 微升 10% 氯化十六烷基吡啶溶液,振荡 15 分钟以提取茜素红 S 染料。接着,将各孔中的溶液转移至单独的 1.5 毫升离心管中,在室温下以 17,000 × g 离心 5 分钟。
在1.5毫升离心管中,用10%西曲氯铵溶液以1:10至1:20的比例稀释提取物。然后,将每种稀释后的样品各取300微升加入96孔板的孔中。设置两个空白孔,仅含10%西曲氯铵溶液。
接下来,通过将40毫摩尔的茜素红S染色液用10%氯化十六烷基吡啶溶液稀释,配制浓度范围为4至400微摩尔的七种茜素红S参考标准品,以绘制标准曲线。
将每种标准品各300微升加入到孔板中。最后,在520纳米波长下测定样品、空白组和参考标准品的吸光度。