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从贴壁巨噬细胞培养开始。
加入促炎性细胞因子。
细胞因子与巨噬细胞表面受体结合,启动一系列炎症反应。
首先,细胞因子信号转导会触发抗菌肽的产生。
同时,巨噬细胞核内的染色质发生去凝集。
这一过程与膜成分的变化共同作用,破坏了核膜,使去凝集的染色质释放到细胞质中。
在细胞质中,抗菌肽与释放的染色质相互作用。
细胞因子信号介导的细胞膜通透化导致去浓缩的染色质释放到细胞外空间,形成巨噬细胞胞外诱捕网(Macrophage Extracellular Trap,MET)。
这些网状结构由DNA、组蛋白、抗菌分子和酶组成。
加入SYTOX Green,一种荧光核酸染料,可选择性结合在胞外陷阱中暴露的DNA。
在荧光显微镜下,MET 呈现为刺激后的巨噬细胞释放出的绿色条纹状胞外 DNA。
在无菌条件下,向完全 RPMI 1640 培养基中加入不同 MET 释放刺激物,配制培养介质。进行次氯酸刺激实验时,在 Falcon 管中用预热至 37 摄氏度的 HBSS 配制 200 微摩尔的次氯酸。
极化处理后,吸出每孔中的细胞培养基,并用1毫升无菌PBS(用于PMA、TNF-α和白细胞介素-8刺激)或HBSS(用于次氯酸刺激)小心洗涤细胞三次。
在最后一次洗涤步骤中去除 PBS 后,加入 1 毫升含有 PMA、TNF-α 或白细胞介素-8 的完全培养基。将细胞置于细胞培养箱中,在 37 °C 和 5% 二氧化碳条件下孵育,TNF-α 刺激孵育 6 小时,PMA 或白细胞介素-8 刺激孵育 24 小时。
进行次氯酸实验时,在最后的洗涤步骤中移除 HBSS 后,加入 1 毫升新鲜配制的次氯酸。然后,将细胞置于细胞培养箱中,在 37 摄氏度、5% 二氧化碳条件下孵育 15 分钟。随后,小心吸除细胞上清液,并用 1 毫升等分试样的 HBSS 洗涤细胞三次。
在最后一次洗涤步骤中移除 HBSS 后,加入 1 毫升完全 RPMI 1640 培养基。然后,将细胞置于细胞培养箱中,在 37 摄氏度、5% 二氧化碳条件下孵育 24 小时。
用HBSS配制浓度为40微摩尔的SYTOX Green染料。将25微升染料直接加入含有HMDM的每个孔中。室温避光孵育5分钟。然后,将HMDM置于倒置荧光显微镜的显微镜载物台上进行成像。
打开宽谱荧光光源、明场光源,以及配备高分辨率彩色数码相机的倒置显微镜。将滤光轮旋转至编号2的位置,以504纳米为激发波长、523纳米为发射波长,用于绿色荧光观察。
使用5倍物镜,先用显微镜的粗调焦旋钮,再用微调焦旋钮对焦,直至图像清晰、明锐且聚焦准确。将显微镜切换至相机模式。
启动相关软件。点击播放按钮预览图像,并调节显微镜上的细准焦旋钮,直至软件预览窗口中的图像清晰、锐利且聚焦准确。然后点击捕获按钮。
在软件中,单击 文件, 保存 作为所需的图像文件类型。在显微镜上,将滤光片轮旋转至5号位置以进行明场成像,并重复上述采集步骤以获得相应的明场图像。