2014年2月21日
通过微流控喷射技术作用于液滴界面脂双层,可可靠地生成具有可控膜不对称性、跨膜蛋白整合及物质包封能力的囊泡。该技术可用于研究多种需要区室化生物分子的生物系统。
本实验的总体目标是制备具有更高膜控制性、非对称性、摩尔浓度、单分散性以及可控内含物的磷脂双分子层囊泡。利用CAD技术,由丙烯酸板和天然橡胶加工制造一个腔室。通过向该腔室内加载脂质和溶液,形成悬浮的脂质双层膜。
接下来,将含有待包封溶液的喷墨装置安装至喷射设备上。在设定好适当的参数后,喷射出的液体脉冲将形成脂质双分子层囊泡。最终,微流控喷射技术可重复地生成单分散的双分子层囊泡。
与现有的电形成、乳化或液滴生成等方法相比,该技术的主要优势在于能够更精确地控制膜的性质、单侧摩尔浓度、单分散性以及内部成分。演示该实验流程的是来自实验室的研究生 Johanna Harrow,协助操作的是本科生 Kara Patel。使用 CAD 软件设计一个腔室的形状,该腔室可通过激光切割机从亚克力材料上加工而成。首先在组装好的亚克力腔室两侧各钻一个 1/16 英寸的通孔,这些孔将通向 infinity 形状的储液井。
第二步,从一块0.2毫米厚的亚克力板上用剪刀裁下一个小矩形,作为无限循环形状的底部。使用快干胶将该亚克力片固定到位,注意避免胶水进入观察区域。亚克力片应与腔室壁齐平,并牢固地固定在腔室底部。
第三,使用快干胶将一小片天然橡胶片粘在钻好的孔上,用镊子将其压紧固定。测试所有粘合接缝是否漏气。
不应有任何残留。最后,使用23号针头通过已钻好的孔在橡胶上穿孔,压电喷墨针头将通过这些孔插入。储备磷脂应溶解于氯仿中,并在负20摄氏度下保存。
D-P-H-P-C 或 DOPC。本演示中使用了脂质。将溶解在氯仿中的脂质转移至玻璃小瓶中,转移时将小瓶倾斜放置,然后在氩气或氮气环境下轻轻干燥脂质。
然后将小瓶的瓶盖略微松开,在真空条件下放置一到两个小时,以去除残留溶剂。此步骤也可使用干燥器完成。现在将脂质溶解于终体积的缓冲液中,使脂质的终浓度为 25 毫克/毫升。
将溶液涡旋混匀。用石蜡短暂封住瓶盖,然后超声处理15分钟。将此溶液在-20摄氏度下保存。
接下来,配制具有生理相似渗透压的蔗糖储备溶液,此溶液即为喷射溶液。可考虑向溶液中加入一滴深色食用染料或荧光微珠,以增强对比度或荧光信号。
将蔗糖溶液吸入1毫升注射器中以去除截留的空气。轻弹注射器,使所有气泡上升至接头开口处并排出。接着,将一个33毫米、0.22微米的滤器连接到注射器上,并通过滤器推出一滴液体。
现在拧下喷墨装置的雌性引诱剂接头,将其压到滤器末端。推出少量液体以排除任何滞留的空气。最后,将注射器连接到喷墨装置液体的顶部。
如果注射器已正确安装,墨水应流向喷墨喷头。首先,将注射器组件安装到显微镜载物台上,并为此实验连接喷墨控制器。载物台和注射器需要独立控制,两者均可在三个维度上移动,以便进行观察。
设置一台高速摄像机,其拍摄速度至少达到每秒1000帧。将摄像机设置为基于图像的自动触发模式以启动录制。现在,用胶带将腔室固定在载物台上,并仔细将喷墨喷嘴与腔室侧面橡胶片上的孔对齐。
首先通过肉眼调整,然后使用显微镜进行精细调节。对齐后,沿一个维度缓慢退出注射器以加载无穷大形状。随后对推杆施加轻柔压力,使喷嘴处形成液滴。
这提供了初步的反向压力。需要设置喷射参数。接下来,屏幕上会显示应用于电压的梯形双极波的具体数值,以及每次触发控制囊泡大小的喷射脉冲次数。
现在将25至30微升的脂质溶液加入腔室中,覆盖整个infinity形区域。然后向每个腔室的最外缘缓慢而平稳地加入25微升葡萄糖溶液,使用移液器小心操作,确保葡萄糖溶液不与脂质溶液混合。10分钟内,脂质双层将在腔室中心形成。
构建双层膜是最关键的步骤,因为双层膜不稳定,其完整性取决于制备过程。请保持耐心,只要反复练习几次加样操作,最终一定能够成功。
现在,当喷墨探针尖端距离液滴界面在 200 微米范围内时,小心地将喷墨探针重新插入腔室中。双分子层,启动喷射过程,并使用喷墨技术记录数据,以深入了解囊泡生成过程。例如,改变喷墨喷嘴与脂质双分子层之间的距离会影响使膜发生形变的力。关闭。
靠近双层膜使射流集中,并防止膜在囊泡生成点处分散能量。此外,施加在压电驱动器上的电压越高,涡流的移动速度越快。囊泡的形成被可视化为生成后的一系列连续事件。
囊泡的稳定性往往随囊泡直径变化,较小的囊泡更稳定。观看本视频后,您应充分了解如何利用微流控喷射技术制备脂质体囊泡。
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本文介绍了一种利用微流控喷射技术作用于液滴界面脂双层来生成磷脂双分子层囊泡的方法。该技术可精确控制膜的不对称性、跨膜蛋白的掺入以及物质的包封。
微流控喷射技术能够精确控制脂质双层囊泡的生成,支持可重复地制备具有确定膜组成和包封能力的巨型单层脂质体(GUVs)。该技术通过提供一个可调节的平台用于模拟细胞系统和测试生物活性化合物,解决了合成生物学和药物递送研究中的一个关键挑战。该方法通过系统性地研究依赖于膜的过程,提高了早期靶点验证的预测可靠性。
该方法可融入从早期假设验证到先导化合物鉴定的整个发现流程,尤其适用于需要可控膜环境和包封化合物递送的检测。