2016年9月26日
本文提供了经髂内动脉(IIA)注射的详细操作步骤,该技术可将癌细胞特异性地递送至后肢组织(包括骨骼),以建立实验性骨转移模型。尽管该方法最初是针对乳腺肿瘤模型建立的,但本方案可轻松扩展应用于其他类型的癌症。
本实验的总体目标是通过髂动脉内注射,将癌细胞直接递送至后肢组织(包括骨骼),从而建立实验性骨转移模型。因此,该方法有助于我们回答有关乳腺癌骨定植的关键问题,尤其是在该过程的早期阶段,乳腺癌细胞如何与骨微环境中的细胞相互作用。今天我们进行了髂动脉注射。
该技术的主要优势在于,它能够高效且选择性地为多种癌症类型建立实验性显微骨转移模型,同时不会造成局部组织损伤。通常,初次接触该方法的研究人员可能会遇到困难,因为在显微镜下准确定位髂动脉注射位置需要一定练习,才能使注射成功率超过百分之九十。首先通过夹捏五至六周龄、体重二十克小鼠的脚趾来确认其镇静程度是否合适。
涂抹眼药膏后,用依次更换的无菌70%异丙醇浸湿的棉签反复擦拭剃毛的右侧腹股沟区域,随后进行碘伏外科擦洗。接下来,用无菌手术巾覆盖小鼠全身。然后,使用无菌的10号碳钢手术刀片和3号刀柄,在右下腹部第四与第五乳头之间的区域做1至1.2厘米的皮肤切口。
将动物转移至标准的台式解剖显微镜下。在4倍物镜下,将钝性分离镊插入脂肪组织与腹膜之间的切口,向两侧推开组织,以暴露髂血管和神经。接着,使用直的精细镊子刺穿血管与邻近血管的神经之间的结缔组织。
然后,将斜角镊子穿过结缔组织并置于髂血管下方,同时将直镊子插入血管另一侧的结缔组织中,以引导斜角镊子穿过组织。我们建议在此步骤中将髂骨边缘和动脉作为一束整体分离并提起。尽管肿瘤细胞仅注射入动脉,但将两条血管一并分离可节省时间和操作难度。
当斜角镊放置到位后,进一步将髂静脉和髂动脉与周围组织分离,并在解剖过程中使血管保持在斜角镊的上方。当血管清晰暴露后,使用直镊将一根4-0丝线缝合线的线端送至斜角镊处,并缓慢轻柔地将缝线从血管下方穿过。此时,髂总静脉和髂总动脉应均由该缝线提起固定。
当血管准备就绪后,将肿瘤细胞上下吹打数次,以重悬为单细胞溶液并分散任何细胞团块。然后,用31号胰岛素注射器每只小鼠吸取100 µL细胞悬液。接着,以缝线为引导,将倾斜的镊子重新滑入血管下方,并打开镊子,使血管轻轻置于镊尖上。
另一只手将针尖斜面朝上插入镊子尖端之间动脉管腔内。缓慢推动针栓注入细胞,细胞悬液将推动血液流经血管。
当所有细胞输送完毕后,轻轻拔出针头,同时用镊子夹住血管使其保持抬高,以防止出血。然后,移除缝线。最后,迅速取下镊子,并用棉签按压切口处 5 至 10 分钟,以止住出血。
在此,展示了经髂内动脉注射5 × 10⁵个GFP荧光素酶标记的MCF-7乳腺癌细胞后,再通过眶后静脉窦注射D-荧光素酶底物,获得的代表性整体动物生物发光图像。注射后第14天,从注射侧髂内动脉供血的后肢骨组织中检测到强烈的生物发光信号,而对侧对照骨组织中未见信号,证实了注射细胞的特异性定位。对荷瘤骨组织进行切片并行苏木精-伊红(H&E)染色,结果显示致密的、鹅卵石样细胞群,细胞核较大,提示在髂内动脉注射后14天,骨组织中已形成显微镜下可见的MCF-7转移病灶。
此外,对骨组织切片进行免疫荧光染色也显示出 MCF-7 细胞与成骨细胞及前成骨细胞相互混杂。一旦掌握,该技术可在十到十五分钟内完成。在完成这些操作步骤后,可采用其他方法回答更多科学问题。
例如,我们可以利用RNA-Seq技术对转移微环境中的细胞进行分析,并将其与正常细胞进行比较。该技术为乳腺癌和前列腺癌研究人员提供了一种在动物体内研究骨微转移的方法。观看本视频后,您应能够充分掌握通过髂内动脉注射建立乳腺癌骨转移模型的操作方法。
请采取适当的预防措施,因为使用氯胺酮和赛拉嗪可能存在极高风险。
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本文详细介绍了通过髂内动脉(IIA)注射将癌细胞递送至后肢组织(包括骨骼)以建立实验性骨转移的方法。该方法对于研究乳腺癌细胞与骨微环境之间的相互作用特别有用。
建立可靠的早期骨转移模型在肿瘤药物研发中仍是一项关键挑战,尤其是在评估靶向微转移定植的治疗干预措施方面。髂内动脉注射技术可实现癌细胞向后肢骨骼的时空同步播散,支持对播散性肿瘤细胞进行可靠定量,同时减少因操作导致的组织损伤所引发的混杂炎症反应。该方法通过允许对惰性骨病变进行连续监测,且不出现全身器官转移,提高了临床前研究的预测可信度,从而增强了骨转移模型在靶点验证和先导化合物筛选中的转化相关性。
髂内动脉注射方法适用于从靶点验证到先导化合物筛选,再到临床前药效测试的整个发现过程,尤其适用于骨靶向治疗药物的研究,其中早期转移模型有助于阐明作用机制和治疗窗口。