2016年11月17日
以下文章提供了一种简便且可重复的技术,用于有效建立可持续的小鼠角膜缘干细胞缺乏症(LSCD)模型。该动物模型可用于测试和比较针对角膜缘干细胞疾病治疗方法的有效性。
本实验的总体目标是建立一种可重复、可持续且持久的小鼠角膜缘干细胞缺乏模型。该简单技术提供了一种稳定的角膜缘干细胞缺乏动物模型,且不会对眼睛造成不必要的损伤,而这是标准化学损伤模型难以实现的。该模型可用于在细胞和分子水平上长期研究疾病的发生发展过程。
以及用于测试或比较新型治疗方法的有效性。在小鼠麻醉后,捏压其脚趾以确认麻醉深度足够。在裂隙灯下检查眼睛,确认角膜无既往损伤。
在眼部滴入一滴1%盐酸四环卡因,等待60秒。随后,轻柔地将5%聚维酮碘涂抹于眼部及周围毛发上。一分钟后,擦去药液或将其涂抹至眼部周围的毛发上,以防止毛发干扰工具尖端。
准备一个无菌的旋转钻头和一把无菌弯头镊子,在操作过程中将其放置在无菌敷布上。现在,用弯头镊子从鼻侧夹住眼睑以固定眼球,并轻柔地外旋眼球。注意不要施加过大的压力。
在手术显微镜下,使用无菌旋转钻头围绕角膜缘区域打磨两次。用旋转钻头以环形方式从角膜缘至角膜缘彻底去除整个角膜上皮,并利用其尖端的侧面进行操作。为避免损伤基质层,切勿对已去除上皮的角膜区域重复刷拭。
切勿对眼睛施加任何压力。根据需要清洁刷头。在角膜上滴加一滴无菌 PBS,并用柔软的清洁纸巾擦去任何脱落的上皮片。
然后,剃除残留的上皮组织(如有)。注意观察小鼠尾巴,以确保手术期间麻醉深度足够。在角膜上滴一滴荧光素钠。
30秒后清洁角膜,并在显微镜下使用钴蓝滤光片检查,以确认上皮已完全去除。手术后,将动物放回笼中并置于加热毯上,观察30至45分钟,直至其完全从麻醉中恢复。在此期间,向眼部涂抹1%红霉素眼膏,并继续每日使用抗生素眼膏一周。
此外,手术后立即皮下注射0.1 mg/kg的布托啡诺,并在术后12小时再次注射,之后每天两次,持续两天。此为手术一个月后的角膜表型,可见明显的新生血管形成,这是角膜缘干细胞缺乏的特征表现。
正常的角膜表达细胞角蛋白12,但不表达细胞角蛋白8,也不含杯状细胞。在角膜缘干细胞缺乏症中,角膜表面会出现细胞角蛋白8和杯状细胞,同时丢失细胞角蛋白12。一旦掌握该技术,可在一个月内诱导出几乎覆盖整个小鼠角膜表面的角膜新生血管,并可稳定维持长达三个月。
应避免重复刷拭已去除上皮的角膜区域,以免引起不必要的基质层炎症和混浊。在建立角膜缘干细胞缺乏模型后,可对不同的实验性治疗方法进行测试和比较。
或者,治疗可以在损伤后不久开始。本视频展示了如何有效去除小鼠角膜缘和角膜上皮,以诱导角膜缘干细胞缺乏症。经过一些修改后,该方法也可应用于其他动物。
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本文介绍了一种可重复的、用于建立可持续性小鼠角膜缘干细胞缺乏症(LSCD)模型的技术。该模型对于研究疾病发生过程以及测试新型治疗方法至关重要。
建立可重复的角膜缘干细胞缺乏症(LSCD)小鼠模型,满足了眼科药物研发中对疾病相关系统的迫切需求。该模型能够实现对靶向角膜疾病再生疗法和抗炎治疗的临床前评估进行机制性风险排除和预测性验证。其稳定的表型特征和良好的转化一致性,有助于推动研发管线的稳健发展,并实现不同项目间的可比性。
该LSCD模型融入了从发现到临床前研究的连续过程,可用于眼表治疗策略的假设验证、先导化合物筛选和转化验证。