2020年10月20日
本文介绍了一种基于质谱蛋白质组学的方法,用于在感染过程中分析宿主与病原体之间的相互作用。该方法通过非标记定量技术,在单次实验中同时检测宿主(例如巨噬细胞)和病原体(例如Cryptococcus neoformans)蛋白质丰度的变化。
本方案从宿主和病原体两个角度研究真菌感染,以鉴定对疾病发生至关重要的生物系统间相互作用。我们可在单次实验中同时检测真菌和宿主的蛋白质,并识别仅在感染过程中表达的真菌蛋白,这些蛋白代表了新的与感染相关的蛋白。尽管我们的研究重点是通过揭示新型抗毒力策略来治疗真菌感染,但所采用的蛋白质组学与生物信息学分析流程具有普适性,可应用于多种生物系统。
我们的方法为研究不同病原体及多种免疫反应奠定了基础,可用于深入揭示隐球菌与先天免疫系统之间的关系。巨噬细胞对病原体的反应以及检测到足够的真菌蛋白至关重要。因此,建议针对每种物种测试并优化感染复数(MOI)和时间点。
由于巨噬细胞和真菌细胞培养可能具有挑战性,了解共培养后可能出现的情况非常重要。可视化结果可帮助研究人员更有信心地实施该实验操作。为准备用于巨噬细胞感染的真菌细胞,需从处于对数中期的培养物中收集并离心 C. neoformans 细胞,随后在相同的离心条件下,用 1 毫升室温 PBS 轻柔洗涤三次。
最后一次洗涤后,将真菌细胞重悬于无抗生素的细胞培养基中,浓度为每毫升 1.2 × 10⁸ 个细胞,并向六孔巨噬细胞培养板中每个含 70% 至 80% 汇合度的孔加入 1 毫升真菌细胞悬液。然后,将培养板放入细胞培养箱中孵育 3 小时。小心倾斜培养板,使每个孔用 1 毫升 PBS 轻柔地洗涤 3 次,每次洗涤每孔使用 1 毫升 PBS。
为测定最后一次洗涤后的感染效率,向六孔板的每个孔中加入一毫升不含抗生素的培养基,并将该板放入细胞培养箱中。在适当的实验时间点,收集每个孔中的上清液,并根据标准方案测定各孔中乳酸脱氢酶(LDH)的含量。在同一时间点,裂解未感染的巨噬细胞,以确定最大细胞毒性值。
随后可使用所示公式计算细胞毒性。对于未感染的巨噬细胞收集与共培养,向每孔未感染的巨噬细胞中加入一毫升冷PBS。一分钟后,轻轻敲击培养板,使细胞从孔底脱落,并将细胞悬液汇集至一个15毫升离心管中。
通过离心收集细胞,并彻底去除上清液,以便将沉淀物立即在液氮中快速冷冻,随后于-80°C保存。对实验流程的数据集进行主成分分析表明,与预期一致,数据中最大分离组分是感染样本与非感染样本之间的差异。样本的第二个区分特征是其生物学变异性。
通过欧氏距离进行层次聚类并结合皮尔逊相关性分析,可明显区分感染样本与非感染样本,其重复样本的可重复性范围为95%至96%。可采用经Benjamini-Hochberg错误发现率校正的Student's t检验,以鉴定感染组与非感染对照组之间丰度存在显著差异的蛋白质。在此分析中,共鉴定出117种在感染后表达水平发生显著变化的宿主蛋白质。值得注意的是,如预期所示,感染期间真菌蛋白质的丰度也显著增加。
在共培养、洗涤和样品收集过程中,轻柔处理巨噬细胞至关重要。通过明确病原体如何适应宿主以及宿主如何抵御感染,微生物学和免疫学领域获得了新的认识。
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本方案利用基于质谱的蛋白质组学技术,研究真菌感染过程中宿主与病原体之间的相互作用。该方法可在单次实验中同时检测宿主和病原体的蛋白质,从而揭示与感染相关的蛋白质特征。
这种无标记定量蛋白质组学工作流程能够在感染过程中同时分析宿主和病原体的蛋白质组,提供无偏倚的蛋白质丰度数据,这对于传染病研究中的靶点验证至关重要。通过鉴定与感染相关的真菌蛋白质和宿主应答特征,该方法支持抗毒力策略的机制性风险评估,并为临床前靶点选择提供依据。该方法在不同宿主-病原体系统间的可转移性,增强了其在抗真菌和免疫调节药物发现项目中的广泛适用性。
该工作流程通过宿主-病原体相互作用分析整合到早期发现生物学中,利用标准化感染模型支持筛选准备工作,并通过将蛋白质组变化与毒力及免疫应答机制相连接,推动转化医学研究。