2021年10月28日
本实验方案描述了通过胫骨内注射骨肉瘤细胞,建立携带原位骨肉瘤及肺转移病灶的小鼠模型。
本方案描述了建立携带原发性骨肉瘤及肺转移病灶的小鼠模型的技术。通过将骨肉瘤细胞注射至胫骨内,该模型能够最大程度地模拟肿瘤性骨肉瘤的临床发展特征。使用微量注射器将精确数量的骨肉瘤细胞直接注入胫骨,可实现一致的肿瘤形成率和肿瘤体积。
在注射骨肉瘤细胞当天,用 PBS 清洗细胞两次。加入 1.5 毫升 0.25% 胰蛋白酶消化细胞 3 分钟,然后加入 6 毫升含 10% 血清的 MEM 培养基。
将细胞收集到15毫升离心管中。吸取20微升细胞悬液至细胞计数板的计数室中,使用自动细胞计数仪计算细胞浓度。在室温下以800 × g离心5分钟。
用移液器吸去上清液,将细胞沉淀重悬于8.5毫克/毫升的基底膜基质中,并置于冰上。将小鼠置于仰卧位。用拇指和食指固定小鼠踝部,用70%乙醇棉片消毒胫骨注射部位。
将每只小鼠的踝关节向外旋转,以移动胫骨和腓骨,并将膝关节弯曲至合适位置,直至通过皮肤可见近端胫骨平台。将针头连接至1毫升注射器上,针尖朝向注射部位,与胫骨轴线平行。经皮插入针头,沿胫骨平台向胫骨远端钻孔。
将先前置于冰上的骨肉瘤细胞悬液吸入微量注射器中,并用装载骨肉瘤细胞的微量注射器替换胫骨中的一毫升注射器。在不施加较大压力的情况下,缓慢向每只裸鼠的胫骨内注射约10微升骨肉瘤细胞悬液。然后将微量注射器从注射部位取出,并用棉签按压注射部位约30秒。
将小鼠放回清洁的笼子中,观察其恢复情况10分钟。该图显示了通过胫骨内注射骨肉瘤细胞建立的原位骨肉瘤小鼠模型及其分离后的形态。每周均可观察到肿瘤体积逐渐增加。
注射荧光素酶标记的骨肉瘤细胞后第一至第六周获得的X射线图像显示,肿瘤体积逐渐增加。此外,向小鼠胫骨注射后获得的图像显示了原位骨肉瘤在体内的生长情况。通过胫骨内注射骨肉瘤细胞所导致的肺转移,成功利用活体生物发光成像系统在体内进行了追踪。
体视显微镜下观察显示,分离的肺组织中存在转移性克隆。石蜡包埋肺组织的苏木精-伊红染色显示转移性病灶。应通过髌韧带将针头经皮插入关节囊,并通过旋转注射器在胫骨平台钻孔,直至达足部胫骨。
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本方案描述了构建携带原发性骨肉瘤及肺转移病灶小鼠模型的技术。通过将骨肉瘤细胞注射至胫骨内,该模型能够最大程度地模拟肿瘤性骨肉瘤的临床发展特征。
通过胫骨内注射建立的原位骨肉瘤模型可实现可重复的肿瘤形成和肺转移,为靶点验证和治疗效果测试提供了一个具有临床相关性的系统。该方法通过在免疫缺陷小鼠中模拟人类疾病的进展过程,支持对原发性和转移性肿瘤负荷进行纵向监测,从而实现机制层面的风险评估。该模型对生物发光和X射线成像具有高敏感性,可提供定量检测结果,对于肿瘤学研发管线中的临床前“推进/终止”决策至关重要。
该模型适用于从靶点验证到先导化合物筛选直至临床前药效评估的整个发现流程,尤其适用于嗜骨性及转移调控类药物。