21 de agosto de 2009
Se describe un nuevo método cuantitativo para la identificación de lipidómica numerosas especies de lípidos en la levadura con la encuesta de exploración de ionización electrospray espectrometría de masas (ESI / MS). Este método supera actualmente los métodos disponibles para la identificación y cuantificación de los lípidos en la capacidad de resolver diferentes formas moleculares de los lípidos, la sensibilidad y la velocidad.
Este protocolo permite analizar rápidamente los componentes principales del lípido de levadura. Comienza con la recolección y lavado de las células de levadura. Las células lavadas se colocan en una mezcla de cloroformo y metanol uno a dos, y se lisaron con perlas de vidrio.
La adición de cloroformo y agua separa las dos fases. Se recoge la fase orgánica, se seca y luego se disuelve la película lipídica en cloroformo para su almacenamiento antes de la espectrometría de masas. Los lípidos extraídos se diluyen en cloroformo y metanol con hidróxido de amonio, y se añade una mezcla de estándares internos.
La solución lipídica ya puede inyectarse directamente en el espectrómetro de masas. Hola, soy Simon Bork del laboratorio de Vladimir Teco en el Departamento de Biología de la Universidad Concordia. Hoy les mostraré un método para cuantificar lípidos de levadura utilizando espectrometría de masas.
Utilizamos este procedimiento en nuestro laboratorio para estudiar los cambios en los lípidos de levadura bajo diferentes condiciones de crecimiento. Así que comencemos. Para iniciar este procedimiento, resuspenda los pellet de levadura previamente preparados y congelados en 1,6 mililitros de agua destilada fría con hielo, y transfiera 1,6 mililitros de la suspensión celular a tubos de centrífuga de vidrio de alta velocidad.
Téngase en cuenta que durante todo este procedimiento, todas las manipulaciones con lípidos extraídos se realizan utilizando pipetas o jeringas de vidrio. Dado que los plásticos generarán una señal de fondo elevada si entran en contacto con cloroformo, inicie la extracción de lípidos añadiendo seis mililitros de una mezcla de cloroformo y metanol en una proporción de uno a dos y 0,8 mililitros de perlas de vidrio medidos en un tubo einor a la suspensión celular. Los volúmenes exactos no son críticos siempre que se mantenga la proporción de uno a dos a 0,8 para cloroformo, metanol y levadura suspendida en agua. Agite en vórtex.
La suspensión celular y las perlas de vidrio se mezclan dos veces durante un minuto cada vez; a continuación, se añaden dos mililitros de cloroformo y se mezcla suavemente, luego se incuba durante cinco minutos a temperatura ambiente con mezclas ocasionales. Después de la incubación de cinco minutos, añada dos mililitros de agua destilada y mezcle suavemente. A continuación, incube nuevamente durante cinco minutos a temperatura ambiente con mezclas ocasionales.
Aquí también, es más importante mantener la proporción de dos a dos a 1,8 de cloroformo, metanol y agua, en lugar de un volumen específico. Cuando la segunda incubación haya finalizado, centrifugue durante cinco minutos a 3000 Gs a temperatura ambiente, recoja todo el sobrenadante de esta primera extracción en un nuevo tubo de centrífuga de vidrio de alta velocidad y agregue 3,2 mililitros de cloroformo a los pellet celulares restantes para una segunda extracción de lípidos.
Vortex las pastillas celulares con el cloroformo añadido dos veces durante un minuto cada vez. Luego, centrifugue durante cinco minutos a 3000 Gs a temperatura ambiente. Añada el sobrenadante de esta segunda extracción al sobrenadante recogido tras la primera extracción. A continuación, centrifugue los sobrenadantes recogidos durante cinco minutos.
A 3000 Gs a temperatura ambiente, los lípidos extraídos ahora están disueltos en la fase orgánica inferior. Deseche la fase acuosa superior y transfiera la fase inferior a un nuevo tubo de centrífuga de vidrio de alta velocidad. Para obtener espectros más limpios en el espectrómetro de masas, centrifugue la fase orgánica durante cinco minutos a 3000 Gs a temperatura ambiente y transfiera todo el sobrenadante a un vial de vidrio.
Seque las grasas disueltas con nitrógeno, disuelva la película lipídica seca en 500 microlitros de cloroformo y almacene a menos 20 grados Celsius hasta que esté listo para analizar las muestras mediante espectrometría de masas. Comience preparando una mezcla estándar de los lípidos en cloroformo según se indica en la tabla uno del protocolo escrito adjunto. Cada lípido representa una clase diferente.
Esta solución puede almacenarse a menos 20 grados Celsius para su uso posterior antes de la inyección de los lípidos extraídos en el espectrómetro de masas. Combine 10 microlitros de la muestra con 10 microlitros de la mezcla estándar de lípidos. Tenga en cuenta que la relación entre el estándar y la muestra puede modificarse según sea necesario.
Resuelva la muestra y la mezcla de lípidos patrón utilizando un espectrómetro de masas micro Q a F, equipado con una fuente de electroaspersión nano que opera a un caudal de un microlitro por minuto. Los ajustes se detallan en la tabla dos del protocolo escrito adjunto. Aunque el uso de la alta resolución de un espectrómetro de masas Q a F es ventajoso, no constituye un requisito obligatorio.
Los parámetros exactos del instrumento variarán entre espectrómetros de masas. Después de la adquisición de datos, se suavizan los espectros de masas, se resta el fondo y se centran los picos. Finalmente, exporte la lista de picos a Excel.
Luego, normalice los picos de cada vidrio lipídico a su estándar interno. Dependiendo de la aplicación, puede ser necesario realizar un procesamiento posterior adicional, como desisotopado y desconvolución. Este método permite la determinación rápida y profunda de los componentes principales del lipido de levadura do.
Aquí hemos resaltado un lípido, que ha sido desconvolucionado por desetiquetado isotópico y normalizado respecto a su estándar interno. Acabamos de mostrarle cómo aislar lípidos de levadura y cómo determinar el lípido de levadura mediante espectroscopía de masas con ionización por electrospray. Al realizar este procedimiento, es importante recordar evitar el uso de plásticos y mantener su muestra dentro del rango lineal de concentraciones.
Este método es bastante flexible y muchos de los volúmenes pueden modificarse según sea necesario. Este protocolo de extracción también es adecuado para otros métodos de análisis de lípidos, como la cromatografía en capa fina y la espectroscopía de masas multidimensional. Eso es todo.
Gracias por ver este video y mucha suerte con sus experimentos.
Vea la transcripción completa y acceda a miles de videos científicos
Este artículo presenta un nuevo método cuantitativo de lipidómica para identificar diversas especies lipídicas en levaduras mediante espectrometría de masas con ionización por electrospray en modo de análisis completo (ESI/MS). Este método mejora significativamente las técnicas existentes en cuanto a identificación, cuantificación, sensibilidad y velocidad de detección de lípidos.
La lipidómica cuantitativa mediante espectrometría de masas con ionización por electrospray (ESI/MS) permite un perfilado rápido y de alta sensibilidad de los lipidomas de levaduras, apoyando la desactivación de mecanismos y la validación de objetivos en las fases iniciales del descubrimiento. Este flujo de trabajo acelera la identificación y cuantificación de lípidos, proporcionando datos sólidos para la interrogación de vías metabólicas y estudios funcionales. El enfoque es directamente relevante para equipos de biofármacos que buscan análisis lipidómicos escalables y reproducibles para orientar decisiones en etapas de descubrimiento.
Este método de lipidómica por ESI/MS es adecuado desde el descubrimiento inicial hasta la identificación de compuestos líderes, apoyando tanto flujos de trabajo basados en hipótesis como de cribado.