24 Nisan 2012
G-protein bağımlı içe düzeltici K ile etkileşim ilaçların belirlenmesi için gerçek zamanlı tarama yöntemi + (GIRK) kanalları açıklanmıştır. Tahlil GIRK kanal aktivitesini ölçmek için membran potansiyeli duyarlı floresan boyalar kullanır. Bu teknik, hücre serileri bir dizi kullanım için uyarlanabilir.
Bu prosedürün genel amacı, grk kanallarını modüle eden yeni ilaçların belirlenmesidir. Bu işlem, öncelikle A TT 20 hücrelerinin 96 kuyucuklu plakaya ekilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım ise, test bileşiklerinin Verset sıvı plaka işlem sistemi kullanılarak seyreltilmesidir.
Ardından, seyreltilmiş test bileşikleri verset kullanılarak hücrelere uygulanır. Son adım, 96 kuyucuklu plakanın Synergy two floresan plaka okuyucuya yerleştirilmesi ve kontrol ile somatostatin çözeltilerinin kuyucuklara enjekte edilmesidir. Nihayetinde, floresan plaka okuyucu, somatostatin tarafından indüklenen floresan sinyalini değiştiren ve böylece Grk kanallarını modüle eden bileşikleri göstermek için kullanılır.
Bu prosedürün patch clamp kaydı gibi mevcut yöntemlere göre avantajı, gerk kanallarını modüle edip etmediklerini belirlemek için çok sayıda bileşiğin hızlı bir şekilde taranabilmesidir. Bu tekniğin etkileri, FI nosiseptif iletiminin inhibisyonuna yol açan ve Gerk kanalını aktive eden bileşiklerin tanımlanabilmesi sayesinde ağrı tedavisine kadar uzanmaktadır. 96 kuyucuklu plakaların kaplanması ve hücrelerin ekilmesi prosedürünü Maribel Vasquez göstermektedir.
Laboratuvarımdaki bir öğrenci bu prosedüre, pituitary A TT 20 hücrelerini %10 at serumu ile desteklenmiş DMEM içerisinde, %5 CO2 içeren nemlendirilmiş bir atmosferde, 37 degrees Celsius'ta büyüterek başlar. Standart bir izolyasyon prosedürü kullanarak hücreleri her beş ila yedi günde bir alt kültüre alarak kültürü sürdürün. Ardından, siyah şeffaf kuyucukları kaplayın.
96 kuyucuklu plakanın tabanını 50 µL poly L lysine ile kaplayın. Kuyucukların inkübatörde 30 dakika boyunca kurumasına izin verin. Ardından fazla poly L lysine'i uzaklaştırın ve hücreleri, her kuyucukta 200 µL besiyeri olacak şekilde 30.000 hücre/kuyucuk yoğunluğunda 96 kuyucuklu plakaya ekin.
Ardından hücreleri üç ila dört gün boyunca inkübatörde saklayın. Kültür ortamını hücre monotabakasından yavaşça aspire etmek için bir aspirasyon düzeneği kullanın, ardından hücreleri 200 µL normal tampon çözelti ile yıkayın. Sonrasında, her birine membran potansiyeline duyarlı boya içeren 200 µL tampon çözelti ekleyin.
Hücreleri 37 °C'de 40 dakika boyunca inkübe edin. 40 dakika sonra, ATT 20 hücrelerini inkübatörden çıkarın, oda sıcaklığına dönmelerini bekleyin ve eski tamponu aspire edin. Ardından, hücrelere MPD içeren taze tampon çözeltisini uygulayın.
Ardından, test bileşiklerinin ve kontrol çözeltilerinin çeşitli konsantrasyonlarını hücrelere uygulamak için sıvı taşıma sistemini kullanın. Floresan ölçümleri öncesinde, hücreleri 96 kuyucuklu plakada test bileşikleriyle birlikte beş dakika boyunca inkübe edin. Bu prosedürde, 96 kuyucuklu plağı bir biotech synergy two floresan plaka okuyucuya yerleştirin.
520 nanometre eksitasyon dalga boyunda ve 560 nanometre emisyon dalga boyunda floresan arka plan sinyalini elde edin. Ardından, Synergy two injektör sistemini kullanarak GIR kanallarını aktive etmek için kuyucuklara G PCR R ligandlarını veya kontrol çözeltisini uygulayın. Daha sonra 302 saniyelik bir örnekleme süresi boyunca on saniyelik aralıklarla veri noktalarını toplayın.
Uyarılma ve emisyon dalga boylarında. Analizin güvenilirliğini belirlemek için Z faktörünü hesaplayın. 0,5 ile 1,0 arasındaki Z faktörleri, analizin kalitesinin mükemmel olduğunu gösterir.
Z faktörleri 0,5'in altında olan plaklar hariç tutulmuştur. Analiz sonucunda floresan sinyali modüle eden bileşikler, içe doğru doğrultucu potasyum kanalı özgünlüğünü doğrulamak amacıyla 2 millimolar baryum klorür veya 500 nanomolar terapin Q varlığında yeniden test edilmiştir; burada somatostatin veya kontrol çözeltisinin eklenmesiyle ATT 20 hücrelerinde zamanla ölçülen temsili bir HLB 0 2 1 1 15 2 floresan sinyali gösterilmektedir. Y eksenindeki floresan yoğunluğu oranı, somatostatin veya kontrol çözeltisi varlığındaki sinyalin, somatostatin veya kontrol çözeltisi eklenmeden önce ölçülen bazal sinyale bölünmesiyle hesaplanmıştır.
Burada, A TT 20 hücrelerinin 500 nano molar Terapin Q ile tedavisi gösterilmektedir. Terapin Q, iki G kanalına bağlanıp bunları bloke ederek somatostatin aracılı floresan sinyal azalmasını inhibe eder. Burada ise, somatostatin aracılı floresan sinyal azalmasını yine inhibe eden 20 mikromolar propafenon ile A TT 20 hücrelerinin tedavisi gösterilmektedir. Bu teknikte uzmanlaşıldığında, uygun şekilde uygulandığı takdirde işlem iki saatte tamamlanabilir.
Bu videoyu izledikten sonra, floresan plaka okuyucu kullanarak grk kanallarını modüle eden ilaçların nasıl tanımlanacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu makale, G proteini kapılı içe doğru doğrultucu K + (GIRK) kanallarıyla etkileşime giren ilaçları belirlemek için kullanılan gerçek zamanlı bir tarama prosedürünü açıklamaktadır. Analiz, GIRK kanalı aktivitesini ölçmek için membran potansiyeline duyarlı floresan boyalar kullanır ve bu sayede çeşitli hücre hatlarına uygulanabilir.
Bu analiz, nörobilim ve kardiyovasküler ilaç keşfinde hedef doğrulamayı destekleyerek, GIRK kanal modülatörlerinin yüksek kapasiteli tanımlanmasına olanak tanır. Gerçek zamanlı ve kantitatif floresan okumalar sağlayarak, düşük kapasiteli elektrofizyoloji yöntemlerine olan bağımlılığı azaltır ve hit-to-lead (başlıktan öncü bileşiğe) ilerleme sürecini hızlandırır. Yöntem, bileşik etkilerini fizyolojik olarak ilgili bir hücresel bağlamda fonksiyonel kanal aktivitesiyle ilişkilendirerek, erken keşif aşamasındaki öngörü güvenini artırır.
Bu analiz, hedef doğrulamadan öncü bileşik tanımlamaya kadar olan keşif sürecine uygundur ve GIRK modülatörlerinin alt süreç optimizasyonundan önce fonksiyonel olarak taranmasına olanak tanır.