一种用于纯化重组细菌蛋白的亲和层析技术

0 次观看2:54 分钟 • November 28th, 2025

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取表达带有聚组氨酸标签目标蛋白的细菌细胞悬液。

在冰上进行超声处理,以最大限度减少蛋白质降解。高频声波可裂解细胞,释放胞内成分,包括目标蛋白。

离心以分离碎片,并将含有蛋白质的上清液转移至注射器中。

过滤上清液以去除聚集体,防止堵塞色谱柱。

取一个镍基亲和层析柱,并进行平衡以实现最佳蛋白质纯化。

将滤液上样到色谱柱中。聚组氨酸标签会与柱内树脂上的镍离子结合,从而使目标蛋白固定在柱上。

用缓冲液洗涤层析柱以去除未结合的蛋白质,并监测洗脱液的紫外吸光度,以确认非目标蛋白质已被去除。

加入含有咪唑的洗脱缓冲液,咪唑可与多聚组氨酸标签竞争镍离子结合位点,从而释放目标蛋白。

紫外吸收的第二次峰证实了目标蛋白的洗脱,该蛋白已可用于后续实验。

在冰上对细胞进行超声处理,采用五个循环,每个循环包括15秒脉冲和30秒暂停。

将细胞裂解液在 21,000 g、4 摄氏度条件下离心 15 分钟后,使用无菌注射器滤器系统过滤上清液。采用配备 5 毫升镍基亲和层析柱的自动化纯化系统,从经无菌过滤的 E. coli 上清液中纯化 HIS 标签的 RTA 组分。通常情况下,洗脱速度设为每分钟 1 毫升,并对整个纯化系统进行冷却,以防止毒素结合效率降低及毒素活性丧失。

用 20 毫升结合缓冲液短暂平衡亲和柱,以去除保存缓冲液。然后,使用注射器将无菌过滤的上清液加载到亲和柱上。用 25 至 35 毫升结合缓冲液洗涤柱子,以去除未结合的蛋白质。

重复洗涤步骤,直至280纳米处的紫外吸光度接近初始紫外值。然后用20至35毫升洗脱缓冲液洗脱结合的RTA组分,并将样品置于冰上保存。应在紫外280值开始上升后尽快开始收集RTA组分,并在该值重新回到原始基线时停止收集。

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最后更新:22 八月 2026