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为了利用双分子互补亲和纯化技术检测并分离一对特定的相互作用蛋白,需将一对双分子荧光互补质粒与转染试剂的混合物加入含有哺乳动物细胞的培养板中。
一个质粒编码一种相互作用的蛋白质——即诱饵蛋白——与报告荧光蛋白片段融合。另一个质粒编码另一种结合蛋白——即猎物蛋白——与荧光蛋白的互补片段融合。
孵育。转染试剂可促进质粒进入细胞。成功转染的细胞可表达定位于细胞膜的蛋白质。
诱饵蛋白与猎物蛋白的相互作用使荧光蛋白片段相互靠近。这导致片段融合并重新折叠,形成具有功能的荧光蛋白,其荧光可在荧光显微镜下观察到。
用含有非离子型去污剂的裂解缓冲液替换培养基,以破坏细胞膜,释放融合蛋白。将细胞裂解液收集至离心管中,离心。
将含有融合蛋白的上清液转移至新的离心管中。加入与荧光蛋白特异性结合的单结构域抗体(nanobody)偶联的琼脂糖微珠,该nanobody可识别并结合折叠状态荧光蛋白上的三维表位。
离心。用缓冲液重悬与融合蛋白结合的琼脂糖珠。加热以使融合蛋白从琼脂糖珠上解离。进行SDS-PAGE以分离各蛋白质,随后使用针对荧光蛋白片段的特异性抗体进行蛋白质印迹(western blotting)。
只有带有荧光片段标记的相互作用蛋白才会被检测到,从而确认其分离。
首先,将 HEK293T 细胞接种于含有 10 毫升 DMEM 的 10 厘米培养皿中。然后,将 2.5 微克的每种双分子荧光互补载体溶于 500 微升转染缓冲液中。
加入10 µL转染试剂,涡旋混合10秒。然后将样品短暂离心,并在室温下孵育10分钟。接着,将DNA转染混合物逐滴加入培养皿中。随后,将样品孵育8至24小时。
按照文本方案中的说明配制细胞裂解缓冲液和添加物补充的细胞裂解缓冲液。然后,用预冷的 PBS 洗涤细胞两次。吸除 PBS,加入 1 毫升预冷的含添加物的细胞裂解缓冲液。
接着,将培养皿置于冰上,孵育五分钟。然后,使用细胞刮刀刮下细胞,并转移至预冷的微量离心管中。在4摄氏度下,以18,000 × g 离心五分钟,以去除细胞碎片。随后,将澄清的上清液转移至新的微量离心管中。
用 1 毫升 PBS 清洗适量的琼脂糖珠。然后在 300 × g 条件下离心珠子,并小心移去上清液。接下来,向每个样品中加入 20 微升琼脂糖珠,在 4 摄氏度下轻轻翻转孵育两小时。
将珠子在300 × g 条件下离心,并用细胞裂解缓冲液洗涤三次。然后,将洗涤后的珠子重悬于50 µL稀释样品缓冲液中。最后,于95 °C加热样品2至3分钟。