2011年9月16日
我们开发了一种在植物中检测蛋白质-蛋白质相互作用的技术。将黄色荧光蛋白(YFP)分割成两个不重叠的片段,每个片段通过Gateway系统与目标基因进行同框克隆,从而表达融合蛋白。只有当目标蛋白质发生相互作用时,YFP荧光信号才会重建。
为了检测两种蛋白质之间的相互作用,需要使用Gateway长片段克隆技术将两个目的基因分别克隆到我们的BF和载体中。将构建好的质粒转化至农杆菌GV3101中。含有相应构建质粒的GV3101菌液将被混合,并共同浸润到叶片中。
如果两个候选蛋白相互作用,则可以利用结果聚焦墨西哥观察到YFP信号。双分子荧光互补(BFC)技术的主要目的是检测两种蛋白之间的相互作用。在vavo中,我们构建了一系列与gateway兼容的BFC和IS双杂交载体,为研究人员提供了易于使用的工具,以开展BFC和ISTO双杂交实验。
在本视频中,我们将展示使用我们的BFC系统的便捷性。为了以不受表达系统限制的方式检测蛋白质及其相互作用,首先需要制备GV3101菌株的细菌培养物。
需要从平板上挑取单个菌落,接种到含有适当抗生素的5 mL YEB培养基中。然后在28°C、200转/分钟的条件下振荡培养过夜。
细菌培养物应在第二天早上准备好。确保细菌已过夜培养。从培养箱中取出培养物,将每种培养物中的一个1.5 mL离心管转移至无菌的1.5 mL离心管中。
将离心管放入台式离心机中。在室温下以1000 ×g离心10分钟,沉淀细菌,弃去上清液。然后通过加入1毫升浸润培养基并轻轻吹打数次重悬菌体沉淀。
重复洗涤步骤再进行两次。此步骤非常重要,因为它有助于去除细菌培养基中残留的抗生素,这些抗生素会在浸润后对植物造成伤害。最后一次洗涤后,用0.5 mL的浸润培养基重悬菌体沉淀,并以浸润培养基作为空白对照,在分光光度计中测定该菌液悬浮液的OD600值。
在测定OD后,你需要使用侵染介质调整OD值,最终OD值应介于1至1.2之间。在进行下一步操作前,应准备好所有细菌悬浮液。
取等量的两种候选蛋白对应的细菌悬液,转移至一个新的1.5 mL离心管中,混合均匀,得到用于侵染的阴性细菌混合物。请准备所有需要的组合,并务必设置阴性对照。侵染时应使用五到六株健康且生长状态良好的植物。
可将植物从培养室中取出,在侵染前将其置于弱光下放置一小时,以打开气孔。这将有助于侵染过程。吸取约100 µL重悬的Resus细菌溶液。
取一支接近一毫升的无针头移液枪,将枪头抵住叶片的下表面。用手指支撑叶片的上表面。
通常情况下,按压活塞。你应该能够看到液体扩散到叶片中,此时中脉感觉更薄。在渗透后,使用记号笔在叶片上标记已渗透区域,否则两天后你将无法辨认出已渗透的区域A。如果你需要用不同的细菌混合液进行渗透,请确保在每次渗透之间用50%乙醇喷洒手套,或更换手套。
尽量在每次浸润之间留出1米的肋间距离,以防止交叉污染。从浸润开始起,应每24小时监测一次PFA信号,持续五天。可使用两个不同尺寸的保护套管来固定样品。
首先,在凹槽盖片上滴加一滴微型水。然后在浸润区域内裁剪一小块刀片纸巾。尽量避免损伤样本中的恶心静脉。
将切割好的刀片组织置于载玻片上的水中,放好后用较小的套管覆盖,并轻轻按压。现在即可在显微镜下观察样品。此处我们使用 NACA T CSS P 两光子共聚焦显微镜来观察 BIFC 信号。
即使是常规的香精墨西哥也可使用。共聚焦显微镜可提供更清晰的图像并检测弱信号。您可以使用YFP参数在此NCAs P二系统中检测VFC信号。
您可以直接双击此处的YFP预设,系统将自动开启激发光并设置发射光检测范围。如果您使用的是其他系统,请参考说明书以正确设置参数。我们希望在观看本视频后,您能够掌握如何利用unbe MI Transcend表达系统进行BFCE实验,以检测蛋白质与蛋白质之间的相互作用。
您也可以将该程序应用于烟草和 AY 植物。我们的 BFC 载体分别包含 HA 标签和 Flag 标签,因此如有必要,您还可以进行免疫共沉淀(co-IP)以验证相互作用。
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本研究介绍了一种利用分裂黄色荧光蛋白(YFP)方法在植物中检测蛋白质-蛋白质相互作用的新技术。通过将YFP片段与目标基因进行同框克隆,研究人员可观察到YFP的重新构象,从而指示蛋白质之间的相互作用。
植物体系中的蛋白质-蛋白质相互作用分析有助于在农用化学品和生物制剂研发中进行靶点验证和作用机制去风险化。兼容Gateway技术的双分子荧光互补(BiFC)系统可实现可重复的体内相互作用筛选,并提供定量的荧光读数,从而提高早期靶点评估的预测可靠性。该方法减少了对间接检测手段的依赖,并促进植物生物学与转化研究团队之间的跨职能协作。
双分子荧光互补(BiFC)系统适用于早期发现阶段,可在基于植物的治疗药物发现中进行先导化合物筛选之前,支持假设验证和检测方法开发。