2014年5月9日
细胞表面蛋白在生物学上具有重要意义,且普遍存在糖基化修饰。本文介绍一种糖肽富集方法,用于溶解、富集并去糖基化这些蛋白,从而便于进行基于液相色谱-质谱的蛋白质组学分析。
本实验的总体目标是富集低丰度的细胞表面膜蛋白。首先通过变性和消化膜蛋白来实现这一目标;第二步是氧化糖链,并将糖基化肽段捕获在树脂表面。
非糖基化肽段随后被洗脱除去。最后一步是将N-连接糖基化肽段从树脂上洗脱下来,用于液相色谱-质谱(LC-MS)分析。最终,鉴定出的肽段序列可回溯比对至相应蛋白质,用于蛋白质的鉴定与定量分析。
今天我将向您演示 Geico 肽段捕获法的工作原理。与现有的糖蛋白捕获等方法相比,该技术的主要优势在于,膜蛋白首先被消化,糖肽的捕获可在同一反应容器中完成。该技术的应用可拓展至疾病生物标志物的发现。
由于gator蛋白可在血液及其他体液中脱落,而血液中循环的糖蛋白与病理过程特异性相关,可作为预后和诊断的生物标志物。首先,配制4毫升低渗缓冲液,其中加入1:100的蛋白酶抑制剂混合物。将1毫升低渗缓冲液加入含有约10的8次方个细胞的细胞沉淀中,冰上孵育15至30分钟。将细胞转移至2毫升离心管中,通过注射器针头反复推注5到10次,使细胞裂解。
然后使用血细胞计数板和台盼蓝染色。为检测裂解效率,将一毫升裂解液与三毫升剩余的低渗缓冲液混合。在4°C下以3000 × g离心15分钟。
将上清液转移至超速离心管中,并将沉淀物保存在-80摄氏度的低温冰箱中。在4摄氏度下以100,000 × g离心2小时。接着,将微粒体组分溶解于200微升变性缓冲液中,然后在100摄氏度下煮沸10分钟。
将加热后的溶液冷却至室温后,加入超纯尿素粉末,使其终浓度为 8 摩尔,并在 37 摄氏度孵育 30 分钟。孵育结束后,向样品中加入 500 毫摩尔的碘乙酰胺储存液,使其终浓度为 15 毫摩尔。
然后将溶液在室温下避光孵育30分钟,以烷基化样品中的游离巯基。随后,向样品中加入1摩尔的DTT储存液,使终浓度为10毫摩尔,并将溶液在室温下再孵育10分钟。为淬灭过量的碘乙酰胺,用pH 8的40毫摩尔Tris缓冲液将所得溶液稀释10倍,然后按胰蛋白酶与总蛋白质量比1:20的比例向样品中加入胰蛋白酶。
使用 Bradford 法测定总蛋白的含量。将消化反应置于 37 摄氏度的培养箱中过夜,以确保反应完全。反应结束后,通过加入 10 毫摩尔盐酸将样品溶液酸化至 pH 1 以终止消化,该条件同时可降解快速蛋白酶(rapidest)。
然后在37摄氏度下于培养箱中孵育一小时,使去污剂快速降解。孵育结束后,通过离心去除形成的沉淀物。使用C18固相萃取柱纯化含有样本肽段的上清液,并通过真空离心干燥仪干燥所获得的样本。
在三氯乙酸处理及消化前后对样品进行SDS-PAGE分析,以确认消化效率。此时,将纯化的肽段溶解于200微升偶联缓冲液中。向肽溶液中加入叠氮化钠,使其终浓度为10毫摩尔/升。
将样品在室温下避光孵育30分钟。孵育完成后,加入亚硫酸钠淬灭过量的亚硝酸盐,使终浓度为20毫摩尔,pH为5,随后在室温下继续孵育10分钟。接着,向肽溶液中加入200微升预平衡的氢化物衍生物树脂溶液和偶联缓冲液。在37摄氏度下孵育反应体系1至2天,并进行末端对末端旋转,以确保完全偶联。反应结束后,用1毫升去离子水、1毫升1.5摩尔氯化钠溶液、1毫升甲醇和1毫升80%乙腈各洗涤树脂两次,以去除未结合的肽。
接下来,收集上清液和洗涤液,用于分析未结合的肽段。将样品置于-80°C冰箱中保存,直至分析。然后用1 mL pH 8的100 mmol/L碳酸铵溶液洗涤树脂3次。
最后,向样品瓶中加入 300 µL 碳酸氢铵。为使 N 糖肽从树脂中释放,加入 PNGase F,并将样品在 37 °C 下以末端旋转方式孵育。
随后,通过离心收集洗脱的肽段,再用一毫升80%乙腈洗涤树脂。将洗涤液与先前收集的溶液合并。最后将所得溶液在真空浓缩仪中干燥,用于液相色谱-质谱分析。
采用富集方法后获得的糖肽样品中,展示了此处所示的非典型糖肽质谱图。N-糖链已被去除,且连接的糖链经P-N-G-A-F处理后转化为天冬氨酸。因此,该质谱图可直接通过任何蛋白质组学搜索引擎,在常见的蛋白质序列数据库中进行检索。
非典型的液相色谱-质谱(LC-MS)结果如图所示,在对细胞微粒体组分进行单次液相色谱-质谱分析时,可鉴定出超过100种糖蛋白。该方法对糖蛋白和糖肽的富集选择性通常高于90%;若使用强阳离子交换(SCX)柱并结合阶梯梯度进一步分级,成功的分析可使富集选择性达到95%。在LC-MS分析前对样品进行预处理,通常可使鉴定到的糖蛋白数量增加一倍。
有时当获得的糖肽量较少时,最终样品中可能会观察到来自小瓶的杂质积累。这些污染物可通过MCX柱去除。因此,在观看本视频后,希望您能够充分理解如何利用我们的糖肽捕获方法来研究自服务膜蛋白。
在进行本方案时,为每个步骤留出样品以备 troubleshooting 也非常重要。试剂的体积也可根据您的具体研究进行优化。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本研究提出了一种糖肽捕获方法,用于富集低丰度的细胞表面膜蛋白。该方法包括变性并消化膜蛋白、氧化糖链,以及捕获糖基化肽段用于液相色谱-质谱(LC-MS)分析。
细胞表面蛋白质组学由于蛋白丰度低、疏水性强以及复杂的翻译后修饰,面临诸多挑战,限制了生物标志物的发现和药物靶点的验证。该糖肽富集方法利用普遍存在的N-糖基化修饰,对细胞表面蛋白进行富集和分析,从而在早期发现阶段提高靶点置信度并降低机制风险。该策略通过从与疾病相关的体系中获取定量的、位点特异性的糖蛋白组数据,支持转化型生物标志物的鉴定以及研发管线的优先级筛选。
该方法可融入从假设验证到先导化合物鉴定的整个发现流程,能够在投入临床前研究之前实现生物学风险降低和预测性验证。