2016年12月10日
在此,我们介绍一种高灵敏度可视化和定量固定细胞中内质网与线粒体之间内源性相互作用的方法。该方案采用了一种优化的 原位 靶向线粒体相关膜界面处的三磷酸肌醇受体/葡萄糖调节蛋白75/电压依赖性阴离子通道/亲环素D复合物的邻近连接 assay
本实验的总体目标是利用原位邻近连接技术,在固定细胞中可视化并量化内质网与线粒体之间的相互作用。该方法有助于回答生物医学领域中的关键问题,通过简单的免疫荧光技术更深入地分析固定细胞中的内质网-线粒体相互作用,有望为疾病治疗策略提供新的思路。该技术的主要优势在于,我们能够在固定细胞中实现对内质网与线粒体相互作用的可视化与定量分析,并且该技术还可应用于患者石蜡包埋组织活检样本。如本视频所示,在原位邻近连接实验中,针对线粒体外膜VDAC1的鼠源一抗与针对内质网膜IP3R1的兔源一抗会结合至线粒体相关膜(MAM)界面处彼此邻近的抗原表位。随后加入带有DNA尾端的邻近连接探针,这些探针分别靶向鼠IgG和兔IgG,可在邻近蛋白存在时形成连接寡核苷酸连接的模板,并通过Texas Red标记的寡核苷酸进行扩增与可视化检测。此反应仅在两种靶蛋白间距小于40纳米时发生,该距离与线粒体相关膜界面上两个细胞器膜之间的实际距离相符。为进行原位邻近连接实验的细胞固定与封闭,将人H7细胞以每孔150,000个细胞的密度接种于未编码的35 mm玻璃底培养皿中。次日,移除培养基,用1 mL PBS洗涤细胞。吸除缓冲液后,加入1 mL 10%甲醛溶液,在室温下振荡孵育10分钟以固定细胞。为终止固定反应,加入1 mL 1 M甘氨酸溶液,并通过旋转混匀培养皿。吸除甘氨酸溶液后,加入1 mL 1×PBS。短暂振荡后吸除缓冲液。接着向细胞中加入1 mL 100 mM甘氨酸溶液,在室温下振荡孵育15分钟。吸除溶液后,加入含0.1% Triton X-100的1 mL PBS对细胞进行透化处理,并重复孵育步骤。吸除去垢剂后,加入1 mL PBS洗涤细胞。移除缓冲液后,向每个培养皿中加入40微升封闭液,将样本置于37摄氏度湿盒中孵育30分钟。孵育结束后轻敲去除封闭液,尽量使每张片子残留的缓冲液体积相等,同时避免样本干燥。为开展邻近连接实验,使用PBS稀释一抗溶液,涡旋混匀后加入培养皿中,在4
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本文介绍了一种高灵敏度可视化和定量固定细胞中内质网与线粒体相互作用的方法。该方法利用优化的原位邻近连接实验,靶向线粒体相关膜界面的特定蛋白质复合物。
定量分析内源性内质网-线粒体相互作用对于降低与细胞信号传导和代谢调控相关的早期发现假设的风险至关重要。原位邻近连接检测技术能够灵敏、多重地检测细胞器接触位点,且无需蛋白过表达,从而提高在疾病相关体系中的预测可信度。该能力有助于在靶点验证与机制通路分析的交叉领域加强项目组合决策。
这种原位邻近连接检测法通过实现对固定细胞和组织中内质网-线粒体相互作用的稳健定量,架起了早期发现与临床前研究之间的桥梁。