2017年11月26日
本文所介绍方法的目的是研究模式生物 C. elegans 在正常衰老过程中蛋白质的聚集现象。该实验方案是一种强大的工具,可用于研究随年龄增长而形成的高不溶性大分子聚集体,并确定蛋白质稳态的变化如何影响蛋白质聚集。
本实验的总体目标是检测秀丽隐杆线虫(C.elegans)在衰老过程中蛋白质不溶性的变化,并评估靶向基因敲降对这一衰老标志物的影响。该方法有助于回答衰老与蛋白质稳态领域中的一些关键问题,例如为何生物体随着年龄增长而无法维持健康的蛋白质组。该技术的主要优势在于能够在无疾病过程干扰的情况下,研究正常衰老过程中的蛋白质聚集现象。
尽管该方法可用于研究秀丽隐杆线虫(C. elegans)中的蛋白质聚集,但也可适用于其他模式生物,例如用于研究小鼠中与年龄相关的蛋白质不溶性。开始处理时,向一个2,800毫升的Fernbach培养瓶中加入207.45毫升S Basal培养基,并根据随附的文字版实验方案添加其他试剂。加入终浓度为50微克/毫升的羧苄青霉素(Carbenicillin)和1毫摩尔的IPTG,然后用带膜的螺旋盖封闭培养瓶。
从25摄氏度培养箱中取出L1期幼虫,转移至15毫升离心管中。在1,900 ×g条件下离心3分钟。离心后,弃去上清液。
在显微镜下,计数每2微升中的L1幼虫数量,并对至少九滴样品的计数结果取平均值。随后,将50,000条线虫加入用于收集年轻线虫的四个 Fernbach 培养瓶中,将100,000条线虫加入用于收集老龄线虫的四个 Fernbach 培养瓶中(培养瓶已在前一步骤中准备好)。然后,根据线虫数量,按比例加入对照RNAi细菌和针对目标基因的RNAi细菌。
加入细菌后,用S Basal补足线虫培养物体积至300毫升。将线虫培养物置于25°C摇床培养箱中,以150 rpm振荡培养至收获阶段。在培养的第二天或第三天收集幼虫,以测定蛋白质溶解度的基础水平。
将蠕虫从一个烧瓶倒入分液漏斗中,在室温下静置沉降10分钟。待蠕虫沉降后,打开活塞,使蠕虫逐滴流入一个50毫升离心管中。接着,将蠕虫沉淀物分装至两个15毫升离心管中。
用 M9 培养基将离心管补至 15 毫升,离心收集线虫。洗涤线虫时,弃去上清液,再用 M9 培养基将离心管补至 15 毫升,重复离心操作。洗涤完成后,将线虫转移至两个 50 毫升离心管中,并用预冷的 M9 培养基将总体积补至 20 毫升。
为去除细菌和死亡的线虫,将两个20毫升的稀释线虫沉淀分别加入两个装有20毫升冰冻60%蔗糖溶液的50毫升离心管中。迅速离心处理。使用25毫升移液管,小心吸取最多15毫升的上层线虫层。
将上层线虫直接放入预冷的含有37毫升M9培养基和辛基酚聚醚-9(octoxynol-9)的冰上溶液中。然后在4°C条件下,以2,700 × g离心3分钟,加速度设为9,减速度设为7。弃去上清液后,将沉淀物转移至四个15毫升离心管中,用冰预冷的M9培养基加octoxynol-9洗涤两次。
然后,离心试管。弃去上清液,并用预冷的M9缓冲液加0.1%辛基苯氧基聚乙氧基乙醇(octoxynol-9)将试管补至15毫升刻度线。用预冷的M9缓冲液洗涤线虫,然后将四管样品合并为两管。
将试管加液至15毫升后离心。弃去上清液,向两支试管中加入室温M9培养基,定容至4毫升总体积,于25°C在旋转摇床上旋转混匀40分钟。旋转后,用冰预冷的含octoxynol-9的M9培养基洗涤线虫两次。
然后用M9缓冲液洗涤两次,并将线虫转移至一个离心管中。在收集前,用不含抑制剂的重装配缓冲液(RAB高盐提取缓冲液)洗涤线虫。去除上清液,直至虫体沉淀表面无液体残留。
然后,估测蠕虫沉淀的体积,并加入等体积含有抑制剂的RAB缓冲液。准备一个装有一半液氮的50毫升离心管,置于干冰上,用巴斯德移液管吸取蠕虫,缓慢滴入管中。待液氮完全挥发后,将冷冻的蠕虫于-80摄氏度保存,直至后续处理。
用液氮冷却研钵,并在干冰上进行动物组织破碎。将冷冻的蠕虫转移至预冷的研钵中,研磨2.5分钟。向粉末中加入100毫升液氮,再研磨2.5分钟。
使用显微镜检查,确保虫体已破碎成小片段。然后将粉末转移至2毫升离心管中,并于-80摄氏度保存。在干冰上,每时间点每种RNAi细菌分别称取两份350毫克的研磨虫体,放入2毫升离心管中。
为了去除高盐可溶性蛋白,向每管中加入两倍于已准备好的含抑制剂RAB重量的溶液,以及终浓度为1毫摩尔的PMSF、200单位/毫升的DNase I和100微克/毫升的RNase A,并在冰上溶解粉末。将悬浮液用1毫升注射器抽吸15次,然后在冰上孵育10分钟。在4°C条件下,以18,400 × g离心20分钟。
穿过脂肪层,将含有高盐可溶性蛋白的上清液收集到每个条件对应的1个2毫升离心管中。去除脂肪并弃去。分装高盐可溶性蛋白样品,于-80摄氏度冷冻保存。
为去除脂质,用700微升含有蛋白酶抑制剂且含1摩尔蔗糖但不含DNase I和RNase A的RAB缓冲液重悬沉淀。将悬液用注射器抽吸10次,并在冰上孵育5分钟。务必彻底移除上清液及脂质并弃去。为去除SDS可溶性蛋白,用700微升RIPA缓冲液重悬沉淀。
将悬浮液用注射器反复抽吸10次,置于冰上孵育10分钟。在4°C条件下,以18,400 g离心20分钟。收集含有SDS可溶性蛋白的上清液,并分装后于-80°C冻存。
每种条件下,将两个样本分别用500 µL RIPA裂解缓冲液溶解后合并,将悬浮液用注射器抽吸10次。注意彻底移除上清液并弃去。用400 µL 70%甲酸溶解最终含有高度不溶性蛋白的沉淀,并将悬浮液用注射器抽吸20次。
将悬液在冰上孵育20分钟。将悬液转入超速离心管中离心,以去除线虫角质层碎片。收集含有高度不溶性蛋白质的上清液,并在-80摄氏度下冷冻保存。
对年轻和年老线虫中不溶性蛋白质组分的总蛋白染色显示,对照组动物中高度不溶性蛋白质水平随年龄显著增加,而长寿动物中则无此现象。对PAB-1(一种含有预测的朊病毒样结构域的RNA结合蛋白)的抗体染色结果证实了质谱分析数据,即长寿动物在衰老过程中仍能维持PAB-1的可溶性状态。对在咽部肌肉中表达tagRFP标记PAB-1的转基因动物进行了体内分析。
在幼龄动物中,tagRFP标记的PAB-1主要弥散分布于咽部。随着年龄增长,从后部咽球开始逐渐形成明亮的点状聚集。在衰老过程中,我们还观察到越来越多的动物在前部咽球出现聚集现象。
在野生型和daf-2突变体背景下,对不同年龄阶段tagRFP PAB-1聚集水平的定量分析显示,在长寿动物中,tagRFP PAB-1的聚集随年龄增长显著延迟。观看本视频后,您应能充分掌握如何收集大量线虫用于蛋白质提取,以及如何分离高度不溶性的大分子聚集体,以便进一步通过质谱或SDS-PAGE进行分析。
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本研究探讨模式生物秀丽隐杆线虫(C. elegans)在正常衰老过程中蛋白质的聚集现象。该方法可用于检测不溶性蛋白质聚集体以及蛋白质稳态对衰老的影响。
在正常衰老过程中研究蛋白质固有聚集现象,为评估与神经退行性疾病靶点验证相关的蛋白质稳态机制提供了一种不依赖特定疾病的分析框架。该方法能够从机制层面降低与衰老群体中蛋白质溶解度和功能衰退关联性假设的风险。通过鉴定能够在不依赖外源性疾病模型的情况下维持蛋白质组完整性的遗传修饰因子,相关研究发现可支持早期药物发现决策。
该方法通过提供一种可定量且具有遗传可操作性的蛋白稳态衰退读数,适用于从早期发现到临床前研究的工作流程,有助于先导化合物的筛选和靶点的优先排序。