2018年4月10日
本文详细描述了生态系统器件制造装置(EcoFABs)的构建方案,该装置可在高度受控的实验室条件下用于研究植物及其与微生物的相互作用。
本实验方案的总体目标是建立标准化的方法,用于构建简化的模式植物生态系统(称为EcoFABs),从而在实验室中开展可控且可重复的实验,以研究植物与微生物的相互作用,并进一步在田间进行验证。该方法可用于在受控环境中研究植物与微生物之间的相互作用,使我们能够深入理解微生物组功能的分子机制,进而将其应用于可持续农业。我们参与设计了首个EcoFAB,该装置采用多种现有的3D打印技术,并对植物生长室进行灭菌处理,从而支持无干扰的高分辨率成像和化学分析。
本文开发的Eco-FAB装置非常适合用于植物与微生物相互作用的分析,因为它整合了根系形态学分析和质谱成像技术。根据文本方案,使用3D打印技术制备一次性一升容器中的Eco-FAB模具后,将40毫升硅氧烷弹性体基础液与不同体积的固化剂混合,具体体积取决于实验需求。将容器置于真空室中至少30分钟,以去除弹性体混合物中的气泡。
然后,将混合物取出,倒入组装好的3D打印塑料模具中。为了形成均匀的PDMS层,必须仔细去除气泡。将混合物转移至模具后,使用压缩空气吹除残留的气泡。
将模具置于85 °C的加热板上保持4小时。让模具冷却5分钟。然后,轻轻地将嵌件从模具中抽出,并使用美工刀缓慢地将PDMS从浇铸框架上分离。
将带有PDMS的模具基底从浇铸框中向上压出。然后,使用刀片或其他工具在边缘处轻轻分离PDMS层与模具基底,并缓慢将其从模具表面剥离。使用15号钝头针,在PDMS层上打直径为1.6毫米的孔,以形成进样通道。
然后,使用剪刀修剪PDMS层的边缘。为了将PDMS层永久键合到显微镜载玻片上,用甲醇冲洗PDMS层的键合面(对应尺寸为7.6厘米×5厘米的显微镜载玻片),然后用压缩空气或超纯氮气枪吹干。将显微镜载玻片和PDMS层放置于等离子清洗仪中,使它们的键合面朝上。
关闭腔室和气体排气阀。然后打开真空泵,抽真空一分钟。打开等离子体发生器电源,将射频(RF)功率调至高挡,持续一分钟。
然后,关闭真空泵和等离子体电源,向腔室通入空气使其恢复至常压。从等离子体腔室中取出显微镜载玻片和PDMS层,并迅速用均匀压力将PDMS层的四边压紧在载玻片上。确保中心椭圆形区域(即根室)不与载玻片接触。
使用超纯水冲洗Eco-FAB装置。将一个Eco-FAB装置放入Eco-FAB容器中,加入70%乙醇直至装置完全浸没。然后盖上容器盖子,轻轻摇晃,使容器内所有表面均接触乙醇,并确保Eco-FAB装置的根生长室充满乙醇,尽量减少或避免产生气泡。
将装置在室温下孵育30分钟后,倒出70%乙醇,并替换为100%乙醇。然后,将装置孵育5分钟。孵育结束后,排干乙醇,并将已灭菌的Eco-FAB置于超净工作台中干燥16小时,直至完全干燥。
如果条件允许,打开超净台内的紫外灯照射一小时,对系统进行灭菌。进行种子灭菌和萌发时,将种子浸泡在70%乙醇中两分钟。然后用移液器吸去乙醇,并用无菌水冲洗种子三次。
接下来,将种子浸泡在10%次氯酸钠溶液中5分钟。然后,去除次氯酸钠溶液,并用无菌水彻底清洗种子三次。清洗后,向种子中加入无菌水,并将试管在4°C条件下孵育7天。
将种子均匀地播撒在含有0.6% Vitagel的0.5倍Murashige和Skoog(MS)培养基上,并用微孔胶带密封培养皿。然后将植物培养至根长约5毫米。
将幼苗转移至Eco-FAB装置时,使用无菌注射器或移液器及无菌水,对Eco-FAB装置的根室冲洗三次,然后用目标生长培养基(如0.5 MS培养基)填充根室。接着,小心地将一株幼苗插入Eco-FAB装置的植株储液室中。从培养皿转移到Eco-FAB装置时,必须小心操作幼苗,以避免根部断裂。
加入3 mL无菌水至容器中,注意避开Eco-FAB装置。这将增加湿度,并减少根室培养基的蒸发。然后,盖上容器盖,并使用微孔胶带密封盖子。
将Eco-FAB放入植物培养箱中,或在适合相应植物生长的控温环境中使用Eco-FAB光照系统。然后,将培养室温度设定为24摄氏度。最后,根据文本方案进行代谢物谱分析和质谱分析。
这些图片显示了在 Eco-FAB 中生长的七日龄拟南芥(Aaabidopsis thaliana)、二穗短柄草(brachypodium distachyon)和柳枝稷(panicum virgatum)。在 Eco-FAB 中,双子叶植物和单子叶植物均能生长至繁殖阶段。这些幼苗代表了在水培培养基中生长 14 天的二穗短柄草(brachypodium distachyon)群体,以及分别在添加了水培培养基的沙子和土壤中生长的植株。
超薄的固体基质层和根系生长室允许光线透过,便于对根系进行显微成像。此处,一株二穗短柄草(Brachypodium distachyon)幼苗被转移至Eco-FAB装置中,并利用Bio-Rad凝胶成像系统内部的相机记录其根系结构。连续三周对总根面积的定量分析显示,早期阶段根系面积逐渐增加,随后呈现线性增长趋势直至实验结束。
在此图中,将含有促进植物生长的根际细菌假单胞菌(Pseudomonas simiae)WCS417的Eco-FAB以每株10的6次方个细胞的剂量添加至植物根系。WCS417微生物定植于整个根系表面,且在根尖区域周围浓度较高。在更换Eco-FAB的培养基并收集根系分泌物时,务必在无菌操作台中完成所有操作,以避免任何污染。
通过使用3D打印夹具或改变PDMS的黏度,也可采用可逆的物理密封方式制备Eco-FAB装置。这种方法能够使用固体生长培养基以及进行直接质谱成像。在Eco-FAB开发完成后,该系统将使全球的研究人员能够利用这些实验室模型生态系统,结合系统生物学和成像技术来研究植物与微生物之间的相互作用。
观看本视频后,您应能充分了解如何构建 Eco-FAB 系统,以及其在生态系统研究中的广泛应用。我们希望这一 Eco-FAB 设计能够帮助其他科研人员实现各自的科学目标。更重要的是,我们期待其他科研人员在此 Eco-FAB 设计基础上进一步改进和完善,并与其他科学家共享,从而作为一个科研共同体,共同构建这些实验室生态系统,以更深入地理解植物与微生物之间的相互作用。
请务必注意,操作微生物和锐器可能具有极高的危险性,在进行此实验步骤时应始终采取必要的安全预防措施。
本文详细描述了EcoFABs的构建方案,这些装置有助于在受控的实验室条件下开展植物及植物-微生物相互作用的研究。
EcoFAB为在受控实验室条件下开展植物-微生物互作机制研究提供了标准化且可重复的平台。该平台通过阐明微生物组在植物健康和应激反应中的功能作用,降低了农业生物技术中靶点验证的风险。该系统通过动态监测根系分泌物、微生物定殖位置以及植物生长表型,提高了基于微生物组的生物投入品中先导候选物鉴定的可预测性与可信度。
EcoFAB 将假设验证、先导物筛选和临床前验证等早期发现阶段整合到微生物组农业解决方案的迭代设计-测试循环中,支持从发现初期到应用开发的连续研究进程。