2024年2月2日
本方案描述了一种基于流式细胞术的高通量筛选方法,用于鉴定可抑制人中性粒细胞上β2整合素活化的小分子药物。
我们的研究聚焦于中性粒细胞整合素。在本研究中,我们旨在建立一种方法,用于筛选β2整合素活化的小分子拮抗剂。我们相信,利用该方法可以发现新的拮抗剂,这不仅有助于加深对整合素生理功能的理解,还可为基于整合素的抗炎治疗提供转化医学层面的见解。
未来,我们将致力于发现新的抗炎药物并解析其作用机制。使用血清移液管,将4毫升肝素化人血小心地叠加在含有8毫升密度梯度介质的15毫升离心管中。在20摄氏度下,以550 ×g离心30至50分钟。
然后使用1 mL移液器移除含有血浆和单个核细胞的上层液体。从下层浑浊条带及其下方约3至4 mL处收集中性粒细胞,转入含有10 mL PBS的15 mL离心管中。轻轻倒置混匀管体2至3次,以混匀中性粒细胞悬液。
将中性粒细胞悬液在 20 摄氏度下以 400 ×g 离心 10 分钟。然后小心弃去管中的上清液,并将沉淀重悬于 5 毫升 PBS 中。再次在 20 摄氏度下以 300 ×g 离心 10 分钟。
去除上清液后,使用真空抽吸法清除管壁及管口周围的残留上清液。将沉淀物重悬于1毫升中性粒细胞培养基中。在1.5毫升离心管中,将1毫升浓度为1.2微克/毫升的抗体溶液与0.2毫升中性粒细胞培养基混合。
向384孔板的阴性对照孔中加入25微升抗体溶液。在15毫升离心管中,将9毫升抗体溶液、21.6微升FMLP溶液和1.7784毫升中性粒细胞培养基混合。向384孔板的阳性对照孔和检测孔中各加入25微升该混合液。
使用多通道移液器,从化合物文库板中转移5 µL化合物溶液至384孔板中。将悬液在500 ×g下离心1分钟。使用16通道移液器,向每孔加入20 µL中性粒细胞悬液。
将培养板置于摇床上,300 RPM 振荡孵育 10 分钟。然后,为固定细胞,向每孔加入 3 µL 16% 多聚甲醛,并在冰上孵育 10 分钟。开启流式细胞仪后,将含有化合物处理的中性粒细胞悬液的 384 孔板放入样品架中。
打开软件。启动新实验。选择384孔板并选择所需的荧光染料。
然后点击“板设置”,拖动以选择所有孔,并点击“样本”。打开高通量开关,在速率面板中选择“高”。在体积框中输入 50。
选择奇数列中的样本,并打开振荡开关。最后,在右侧面板中为样本命名。所测试化合物的平均荧光强度值均高于 cutoff 线,表明这些化合物中未发现β2整合素拮抗剂。
本研究建立了一种基于流式细胞术的高通量筛选方法,用于鉴定可抑制人中性粒细胞上尾2整合素活化的小分子药物。该方法旨在发现新的拮抗剂,以增进对整合素生理功能的理解,并为基于整合素的抗炎治疗提供依据。
高通量流式细胞术筛选整合素抑制化合物可快速鉴定出调控中性粒细胞活化的小分子,这是炎症性疾病研究中的一个关键转折点。该方法有助于提高靶点验证的预测可信度,并加速抗炎药物发现早期阶段的项目筛选。将报告构象变化的抗体与自动化细胞分析平台相结合,可增强从发现到临床前评估的转化连续性。
这种高通量筛选方法连接了早期发现与先导化合物鉴定,为在原代免疫细胞中评估靶向整合素的化合物提供了可靠的实验流程。