2024年8月30日
本方案展示了如何利用单分子磁镊技术研究端粒DNA结合蛋白(端粒重复序列结合因子1 [TRF1] 和 TRF2)与从人类细胞中提取的长端粒之间的相互作用。文中描述了端粒和端粒重复序列结合因子的制备步骤、单分子实验的操作流程,以及数据采集与分析方法。
单分子方法已被用于研究端粒蛋白与DNA的相互作用。然而,构建含有端粒重复序列的单分子体系仍是一项具有挑战性的任务。在本方案中,我们概述了表达并纯化TRF2蛋白、制备端粒DNA、建立单分子力学实验以及分析所得数据的各个步骤。
单分子技术是研究端粒蛋白与DNA相互作用的有力工具。单分子力学方法,如磁镊、光镊和原子力显微镜(AFM),已被用于研究TRF2依赖的DNA形变,揭示TRF2介导人端粒染色质形成柱状堆积结构,并观察端粒酶催化活性等多种应用。我们采用单分子磁镊技术研究端粒DNA与蛋白质的相互作用,能够在施加外力的条件下,精确测量蛋白质与DNA相互作用过程中DNA长度的变化。
通过这些测量,我们推导出了端粒DNA-蛋白质复合物的解离动力学。此外,还揭示了这些复合物内部环状结构的形成。目前已利用冷冻电镜、X射线晶体学和核磁共振技术解析出大量端粒结合蛋白与DNA复合物的结构。
这些结构方法推动了我们对端粒蛋白与DNA相互作用的理解。为了进一步研究这些相互作用的动力学特性,我们开发了一种专门用于起始端粒蛋白与DNA相互作用的单分子力学方法。单分子技术是研究端粒酶中蛋白与DNA相互作用的有力手段,尤其适用于蛋白质拓扑构象的确认以及蛋白-DNA结合与解离动力学的分析。
开始转化大肠杆菌BL21 DE3细胞时,将50微升感受态细胞悬液置于冰上解冻。向感受态细胞悬液中加入1微升pET28a-SUMO TRF2质粒DNA,轻轻涡旋混匀。转化完成后,取100微升细胞悬液涂布于含有50微克/毫升卡那霉素的Luria-Bertani(LB)琼脂平板上。
将细胞在37摄氏度下孵育过夜。次日,挑取转化细胞的单菌落,接种于5毫升含有50微克/毫升卡那霉素的LB培养基中进行培养。在37摄氏度、220转/分钟振荡条件下孵育18小时。
孵育后,加入异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)至终浓度为1毫摩尔/升,以诱导培养物表达。在20摄氏度下孵育17小时,以促进蛋白表达。将粗蛋白提取物与上样缓冲液一起上样至SDS-PAGE凝胶中。
首先在Tris-甘氨酸缓冲液中以100伏电压运行样品30分钟,随后以120伏电压运行50分钟。然后使用考马斯亮蓝染色以观察蛋白质表达。进行蛋白质纯化时,将粗蛋白提取物在4摄氏度下以38,000G离心40分钟,并通过0.22微米注射器滤膜过滤上清液。
将过滤后的上清液加入已用结合缓冲液预平衡的镍柱中。用结合缓冲液洗涤柱子,并用预先配制的咪唑梯度稀释蛋白,收集12个组分,每管1毫升。向浓缩并置换缓冲液后的蛋白中加入甘油,使其终浓度为50%,用于储存。
通过SDS-PAGE分析成功证实了TRF2在大肠杆菌(Escherichia coli)中的表达,结果显示在诱导前和诱导后均出现对应于TRF2的明显条带。首先,将含有端粒限制性片段DNA的1×10⁷个HeLa细胞系在1,000×g下离心3分钟。弃去上清液,并将沉淀重悬于200 µL PBS中。
经SDS、蛋白酶K和氯化钠处理后,将细胞悬液在16,900 × g离心10分钟。将上清液转移至新的离心管中,加入等体积的异丙醇,避免混入漂浮的脂质或沉淀物。高速离心后,用500 µL 70%乙醇洗涤沉淀。
干燥DNA沉淀后,小心地将其重悬于475微升TE缓冲液中,并通过轻弹管底轻轻混匀。然后加入25微升浓度为10毫克/毫升的RNase A,轻弹管壁直至沉淀完全溶解。接着加入1/10体积的3摩尔醋酸钠和两倍体积的预冷100%乙醇,将离心管置于-80摄氏度环境中冷冻2至3小时。
离心并用70%乙醇洗涤后,向DNA沉淀中加入100微升TE缓冲液。轻弹管壁混匀,置于4摄氏度环境中两小时,使其充分溶解。进行DNA消化时,将4微克基因组DNA与1微升CVIA 2、2微升10倍消化缓冲液及适量水混合,总体积为20微升。
将混合物在25摄氏度下孵育12小时。在热循环仪中,将混合物于75摄氏度加热3分钟,随后每30秒降低温度0.1摄氏度,直至达到25摄氏度。清洁并干燥后,用20微升0.1%硝酸纤维素涂抹底部盖玻片,并加入参考微珠。
将盖玻片在 100 摄氏度下烘烤 4 分钟。组装流动池夹心结构,加热至 85 摄氏度后,用两根棉签轻轻按压组件,直至石蜡膜完全密封通道。使用磁铁将 10 微升 M270 磁珠用 50 微升工作缓冲液洗涤 5 次。
洗涤后,将珠子加入到已消化的基因组DNA上,转移至1.5毫升离心管中。轻轻弹动离心管数次,以混匀珠子与DNA样品。将混合物置于冰上孵育1小时。
孵育后,使用磁铁将磁珠沉降,每次用500微升工作缓冲液洗涤,共洗涤三次,每次间隔10分钟。将样品重悬于工作缓冲液中,取30微升混合物加入流动池。30分钟后冲洗未结合的磁珠。
将流动池放置在物镜上方后,选择一对呈垂直排列的5毫米立方磁铁,并将磁铁支架与磁镊光路的X轴对齐以进行成像。启动图形化编程软件,连接磁镊控制器。调节视野以定位流动池底部的一个参考微球,并轻微调整物镜位置,使参考微球呈现出清晰的衍射环。
编写一个 MATLAB 脚本以控制力斜坡实验中的电机运动。将该脚本导入图形化编程软件,用于测试单分子实验。在较低流速下,向流动池中加载 200 微升浓度为 10 纳摩尔的 TRF1。
结合30分钟后,选择一个力斜坡实验的程序,设置力加载速率为正负一皮牛顿每秒。命名数据文件并运行实验。通过琼脂糖凝胶电泳确认基因组DNA的完整性,结果显示不同人类细胞系中的TRF长度一致。
通过Southern印迹法检测到TRF中的端粒重复序列,显示出清晰的杂交信号。力-伸展曲线在力程实验中拉伸时呈现锯齿状模式,表明蛋白质与DNA相互作用的断裂。端粒DNA-蛋白质复合物的解离动力学显示,作用力与解离速率之间存在线性关系。
此外,通过研究人类细胞中端粒DNA的长度异质性,可探讨不同长度端粒中的环状结构形成机制。
本方案概述了使用单分子磁镊技术研究端粒DNA结合蛋白TRF1和TRF2与人类端粒之间相互作用的方法。内容包括端粒和蛋白的制备、实验操作步骤,以及数据采集与分析方法。
单分子磁镊技术能够对端粒蛋白与DNA的相互作用进行精确且定量的研究,直接为早期肿瘤药物发现中的靶点验证和作用机制风险评估提供依据。通过解析TRF1/TRF2在全长人端粒DNA上的解离动力学及环状结构形成过程,该方法在发现生物学与转化研究的交汇点上显著提升了预测的可靠性。该技术通过阐明候选调控分子对端粒维持机制的功能影响,支持药物研发管线的决策制定。
这种单分子力学检测方法通过实现对端粒蛋白-DNA相互作用的假设驱动式探究,连接了早期发现、先导物识别和转化研究。