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将带有固定组织样本的玻片放入抗原修复缓冲液中并加热。
升高的温度以及缓冲液的碱性 pH 值可破坏固定诱导的蛋白质交联,从而暴露抗原表位。
冷却载玻片以防止热诱导的组织损伤,然后冲洗以去除多余的缓冲液。
施加疏水屏障,并将载玻片置于湿室中。
加入通透-封闭缓冲液。该缓冲液中的去垢剂可通透细胞膜,封闭蛋白则可封闭非特异性结合位点,以降低背景染色。
去除多余的缓冲液,加入金属偶联的抗体混合物,孵育以使抗体与特异性抗原结合。
洗涤载玻片,去除未结合的抗体。
加入一种与金属结合的细胞核染料,该染料可进入细胞并与DNA结合。
洗去多余的染料,并将玻片干燥。
使用光学扫描仪获取组织结构特征的高分辨率图像,以辅助解读染色样本的成像质谱流式细胞分析数据。
从一张五微米厚的预处理组织切片开始,将其置于适用于免疫染色的载玻片上。将载玻片放入玻片邮寄盒中。
进行热诱导表位修复(HIER)时,将HIER缓冲液加入载玻片盒中,直至组织完全浸没。将载玻片盒放入脱蜡室,并启动加热程序。
程序结束后,将载玻片夹放入盛有冷水的托盘中,使其冷却。用蒸馏水多次冲洗载玻片,冲洗体积逐渐增加。
从载玻片盒中取出载玻片,擦去多余的缓冲液。为防止封闭缓冲液和抗体流失,使用疏水屏障笔在组织周围画圈。
将载玻片置于定制的湿盒中孵育一小时。为进行非特异性封闭,向湿盒中的载玻片加入封闭缓冲液。孵育结束后,除去多余的封闭缓冲液,并让残留的缓冲液在室温下自然晾干。
将抗体溶液小心地加至组织上,于4°C的湿盒中孵育过夜。
孵育后,用含Triton的PBS洗涤玻片5分钟。最后,用PBS冲洗玻片两次,每次5分钟。随后,用嵌入染料处理组织,并在室温下的湿盒中孵育三十分钟。
孵育后,用HPLC级水洗涤载玻片5分钟,并在干燥器中干燥30分钟。
载玻片干燥后,使用平板式文档扫描仪以不低于1200 dpi的分辨率进行扫描。