2011年7月11日
我们介绍一种新方法,可在标准实验室逆转录反应中,从单细胞数量级的 mRNA 获得更高产量的 cDNA。该方法的创新之处在于使用微混匀仪,利用声学微流现象,在微升级别上实现比振荡、涡旋或吹打更为有效的液体混匀。
该实验步骤可提高从单细胞数量级mRNA中获得的cDNA产量。首先,将微型混匀器置于设定为所需逆转录反应温度的培养箱中进行预热平衡。然后配制标准的实验室逆转录(RT)反应体系,其中包含单细胞数量级的RNA,体积为微升级别。
将反应管牢固地放入混匀孔中,选择合适的混匀参数,然后开启微量混匀仪。最终,该步骤可用于通过定量 PCR 获得更高的 cDNA 产量,作为逆转录反应的准备。将微量混匀仪置于 37 °C 培养箱中,至少平衡 1 小时。
在标准的无菌、无核酸酶的200微升薄壁PCR管中,按照试剂供应商的说明配制逆转录反应体系,但使用单细胞量的总RNA作为输入。然后选择适当的微混匀频率和振幅。
接下来,将离心管牢固地放入微量混匀仪中,然后打开微量混匀仪。让反应进行60分钟;反应完成后,关闭微量混匀仪,并将反应体系立即转移至冰上,用于后续下游实验。与其他方法相比,微量混匀在逆转录(RT)反应中的主要优势在于cDNA产量。
在该定量聚合酶链式反应分析中,使用特异性引物检测代表神经元 mRNA 的 cDNA 的 qPCR 曲线,展示了在逆转录反应(RT 反应)开始前的孵育阶段,前 5 分钟或整个 60 分钟进行 microm 混匀处理的效果。前 5 分钟的 microm 混匀处理相较于未混匀组并未带来显著改善。然而,持续 60 分钟的 microm 混匀处理显著提高了产物得率,其效果相当于增加了 15 个 qPCR 循环。
此外,QPCR 的熔解曲线分析表明,在前一个 R2 反应的全部 60 分钟内进行微混合,可在重复样本中产生一致的信号,如红色轨迹所示。相比之下,仅在前五分钟进行微混合(如蓝色轨迹所示)或仅进行振荡(如黑色和灰色轨迹所示)则表现出不同的信号模式,其中灰色轨迹为无模板对照。
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本文介绍了一种利用微混合器提高单细胞mRNA反转录中cDNA产量的新方法。该技术利用声学微流效应,改善标准反转录反应中的液体混合效果。
提高单细胞mRNA的cDNA产量,可解决靶点验证和表型筛选工作流程中的一个关键瓶颈。该方法通过实现对每个细胞中更多基因进行定量精确分析,从而提升早期发现阶段决策的预测可靠性。该技术通过从有限的生物样本中获得可重复、可扩展的分子读出结果,有助于降低治疗假说的风险。
该方法适用于早期发现阶段,特别有助于从靶点假设生成向先导化合物识别的过渡,通过提升功能筛选中分子输入的质量和数量来实现这一目标。