2018年2月8日
研究肿瘤微环境可能发现用于预测免疫治疗临床反应的预后或预测性生物标志物。本文介绍了一种基于 原位 荧光多光谱成像用于自动分析和计数CD8的不同亚群+ T细胞。这种可重复且可靠的技術適用於大隊列分析。
多重免疫荧光分析的总体目标是根据细胞表型自动计数细胞。该方法通过多荧光标记和自动细胞计数,分析肿瘤微环境中肿瘤免疫细胞的表型与功能。该技术有助于基于直接来源于肿瘤微环境的标志物,生成两种类型的复合预后预测。
通常,初次接触该方法的研究人员可能会遇到困难,因为表型分析过程非常漫长,且获得的原始数据需要进一步处理。我们最初提出该方法的想法,是在尝试对安诺德·米兰提细胞的表型及其免疫学相互作用进行表征时。解冻后,使用纸巾小心擦干组织切片周围的载玻片,然后用疏水屏障笔在组织周围画圈。
待屏障干燥后,将样本置于100%丙酮中固定5分钟,随后室温晾干2分钟,再用TBS缓冲液洗涤载玻片10分钟。将载玻片在避光条件下用3滴0.1%亲和素(Avidin)溶液预处理10分钟,然后轻敲或轻弹载玻片,使亲和素溶液覆盖组织。每个样本加入3滴0.1%生物素(biotin),同样轻敲或轻弹使生物素溶液均匀覆盖样本,随后按上述方法进行TBS缓冲液洗涤。
然后在室温下用 100 µL 含 5% 正常血清的 TBS 封闭非特异性结合位点,孵育 30 分钟。孵育结束后,轻拍玻片以去除多余的血清,并在湿盒中加入 100 µL 目标一抗混合液,孵育 1 小时。将标记抗体的玻片在 TBST 中洗涤 5 分钟。
干燥后,在湿盒中加入100 µL目标二抗混合液,标记30分钟,随后用TBS缓冲液洗涤10分钟。将干燥后的载玻片上的二抗标记样本加入100 µL目标三抗混合液,孵育30分钟,再用TBS缓冲液洗涤10分钟。洗涤结束后,干燥载玻片,并使用含DAPI的封片剂封片。
然后用盖玻片封固每张载玻片,并让封片剂至少固化两小时。扫描载玻片时,打开显微镜软件并加载图像扫描程序,将第一张载玻片放置到显微镜载物台上。
然后在控制栏中,单击设置曝光时间,并调整每个滤光片的曝光时间,直到获得足够但未达到饱和的信号。单击上方面板中的“开始”,并打开 LabID 文件夹。输入第一张载玻片的编号,然后单击“下一步”。
在4倍放大倍数下获取明场光下的载玻片整体图像,请点击单色成像并找到样本。若要选择需要扫描的组织区域,请按住控制键并使用光标选择或取消选择需在4倍放大倍数下扫描的兴趣区域。为获得每个区域的红色/蓝色/绿色荧光图像,请点击低倍成像。
选择高倍视野时,按住控制键并至少选择五个与将在20倍放大下扫描的组织区域相对应的兴趣区域。然后,为获取每个视野的多光谱图像,单击高倍成像,再单击数据存储,将图像保存至相应的实验室ID文件夹中。在文件菜单下创建新项目时,选择新建项目;在查找功能菜单下,选择细胞分割;在表型分析菜单下,选择表型分析,然后单击配置。
在图像格式中,选择多光谱。在样本格式中,选择荧光。为了将代表性图像整合到项目中,在文件菜单下点击打开图像,并选择该系列中 10-30 张代表性图像。
为消除自发荧光,打开未染色切片,选择光谱库来源及相应的荧光染料。点击自发荧光选项,并在空白切片上选择自发荧光区域。为生成复合图像,选择“全部准备”以整合荧光光谱库与自发荧光光谱。
单击眼睛图标以打开视图编辑面板,并取消选择自发荧光,以去除自发荧光信号。为每个标记选择合适的颜色。要进行细胞分割,请在区室菜单中选择细胞核和细胞膜。
在“nuclei”菜单下,将 DAPI 设置为细胞核复染剂。点击“segment cells”,并检查细胞膜中细胞核的分割情况。为了对细胞进行表型分析,在“phenotype”菜单下,点击“add”。
为创建细胞表型类别,需选择五种以上具有代表性的荧光染料及荧光染料组合,然后点击“训练分类器”。分类器将生成一种算法,为每个细胞分配相应的表型,并提供置信区间。放大图像以检查细胞的表型。
然后单击“表型全部”以保存表型算法和图像项目,在文件菜单下选择“保存项目”。接着为项目命名并保存。要对系列进行批量分析,请选择批量分析并选择已保存的项目。
选择一个文件夹用于存储批量数据。添加待分析的图像,然后点击运行。分析结束后,检查合成图像的质量,并验证该系列中所有图像的表型鉴定结果。
通过荧光多光谱成像技术对透明细胞肾细胞癌标本中的肿瘤浸润性CD8阳性T细胞进行分析,结果显示约一半的CD8阳性T细胞仅表达PD-1(单阳性),约1/3同时表达PD-1和Tim-3(双阳性)。在将这些不同细胞信号整合至组织切片后,进一步测量PD-1阳性且Tim-3阳性与PD-1阳性但Tim-3阴性的CD8阳性T细胞中PD-1的荧光强度,发现当Tim-3共表达时,PD-1的平均荧光强度(MFI)更高,这强化了Tim-3表达的功能相关性。在此代表性实验中,66%的肾癌患者也呈PD-1配体表达阳性,而100%的患者呈Tim-3配体Galectin-9阳性。
对肾细胞癌患者肿瘤组织的临床评分也表明,表达PD-1和Tim-3的肿瘤浸润性CD8阳性T细胞的数量和百分比与预后评分参数呈正相关,而表达PD-1但不表达Tim-3的CD8阳性T细胞则无此相关性。有趣的是,CD8阳性T细胞中同时表达PD-1和Tim-3的百分比高于中位数的肾细胞癌患者更易发生复发,而仅表达PD-1但无Tim-3共表达的情况则与患者复发无关。在进行该实验操作时,重要的是应由两名独立的研究人员(如有条件,应包括一名病理学家)共同对细胞表型进行复核。
在完成该操作后,可进一步开展其他实验,如流式细胞术,以探究体外刺激后自身表型对细胞功能影响的更多问题。该技术建立后,为癌症领域研究人员探索病变器官中的免疫应答开辟了道路。
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本研究介绍了一种基于细胞表型自动计数肿瘤免疫细胞的创新性多重免疫荧光分析方法。该技术旨在分析肿瘤微环境,并鉴定可用于预测免疫治疗反应的预后生物标志物。
多重免疫荧光分析可实现对肿瘤微环境中免疫细胞表型的自动化定量,有助于免疫肿瘤学中的靶点验证和生物标志物发现。通过检测CD8+ T细胞上PD-1和Tim-3等抑制性受体的共表达情况,该方法可为患者分层和治疗反应预测提供可靠依据。该技术解决了发现阶段的一项关键挑战:将空间免疫谱型转化为可用于项目筛选和机制去风险化的可操作信息。
该方法适用于从假设验证到先导物鉴定的整个发现过程,能够实现免疫谱型分析,从而为靶点可信度评估和转化生物标志物的匹配提供依据。