2019年8月27日
在本研究中,我们通过监测蛋白质稳定性的变化并估算蛋白质-配体相互作用的亲和力,增强了DARTS实验的数据分析能力。这些相互作用可绘制成两条曲线:一条为蛋白水解曲线,另一条为剂量依赖曲线。我们以mTOR与雷帕霉素的相互作用作为示例案例。
药物亲和反应靶标稳定性(DARTS)是一种用于检测新型小分子蛋白靶点的可靠方法。该方法可用于验证已知的小分子-蛋白相互作用,并发现天然产物的潜在蛋白靶点。在本研究中,我们通过监测蛋白稳定性变化并估算蛋白-配体相互作用的亲和力,进一步增强了DARTS实验的数据分析能力。
蛋白质-配体相互作用可绘制为两条曲线:蛋白水解曲线和剂量依赖性曲线。我们以mTOR与雷帕霉素的相互作用为例,建立本实验方案。使用含10%胎牛血清、2毫摩尔谷氨酰胺和1%抗生素的DMEM培养293T细胞。
将培养物在37摄氏度、5%二氧化碳条件下孵育。当细胞培养达到80%至90%融合度时,用预冷的PBS洗涤细胞两次。使用细胞刮刀将细胞收集到适量的预冷细胞裂解缓冲液中,并将正在裂解的细胞转移至1.5毫升离心管中。
颠倒混匀裂解缓冲液与裂解的细胞,置于冰上孵育10分钟。在4°C条件下,以18,000 ×g离心10分钟。将上清液转移至新的1.5毫升离心管中,并保持在冰上冷却。
采用BCA法测定裂解液的蛋白浓度,并根据蛋白浓度计算蛋白酶的稀释比例。首先,将裂解液分别转移至两支1.5毫升离心管中,每管99微升。向每份裂解液中加入1微升小分子储备溶液,随后将两支离心管在室温下振荡孵育30至60分钟。
在冰上,用1x TNC对新鲜解冻的蛋白酶溶液进行系列稀释。小分子孵育后,将每份等分试样分装到五个管中,每管20微升。为确保消化时间一致,每隔30秒按特定时间间隔向各样品中分别加入2微升配制好的蛋白酶溶液。
对于一个对照组,加入 2 µL 的 TNC 缓冲液。在 5 到 20 分钟后,以 30 秒为间隔,向六个试管中分别加入 2 µL 冷的 20× 蛋白酶抑制剂混合液以终止消化反应。充分混匀后,冰上孵育 10 分钟。
将每个样品与六微升5x SDS-PAGE上样缓冲液混合并稀释,然后在70摄氏度水浴中煮沸10分钟。接下来进行Western blot实验:将等量的蛋白质样品与合适的分子量标记物一起加入8% SDS-PAGE凝胶的加样孔中。以80伏电压电泳30分钟,随后将电压调至120伏,继续电泳一至两小时。
验证小分子能否直接结合潜在靶标蛋白。在本方案中,通过与小分子孵育确认了对蛋白酶解的保护作用。与对照溶剂相比,雷帕霉素孵育后发现三条条带受到保护。
Western blot 结果显示,在低木瓜蛋白酶与蛋白比例下可检测到 mTOR 蛋白的存在,随着比例的增加,mTOR 蛋白逐渐减少并最终消失。mTOR 蛋白被木瓜蛋白酶降解的过程明显受到雷帕霉素存在的抑制,加入雷帕霉素后,蛋白水解曲线出现显著偏移。雷帕霉素以剂量依赖方式提高了 mTOR 蛋白水平,提示雷帕霉素处理增强了 mTOR 蛋白的稳定性。
对目标蛋白条带强度的定量分析表明,mTOR 是雷帕霉素的作用靶蛋白。为了获得最佳的逐步效应,本实验可能需要重复多次,以得到合适的蛋白酶与蛋白比例范围。
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本研究通过监测蛋白质稳定性变化并估算蛋白质-配体相互作用亲和力,提升了DARTS实验的数据分析能力。mTOR与雷帕霉素的相互作用是该分析的一个典型示例。
增强型DARTS检测提供了一种无需标记、在天然状态下验证小分子靶点结合的方法,有助于早期靶点去风险化。通过蛋白水解和剂量依赖性曲线量化结合亲和力,该方法可在苗头化合物向先导化合物转化过程中提供机制层面的信心。此方法有助于优先筛选出具有已验证靶点相互作用的化合物,减少因下游筛选中假阳性结果导致的候选化合物淘汰。
该检测介于初筛命中确认与先导化合物优化之间,在细胞功能检测之前提供生物物理层面的验证。