2026年4月3日
本方案描述了从新生儿和儿科患者中采集和保存血液样本的方法,并应用单细胞RNA测序(scRNA-seq)、蛋白质组学和光谱流式细胞术对这些样本中的免疫细胞群体进行表征。
我们的研究通过从小量血液样本中进行纵向高维多组学分析,定义了生命早期免疫系统在出生后的适应机制。该方案可应用于新生儿和儿科研究,对健康、感染及炎症状态下有限生物样本的纵向免疫谱进行分析。首先,将含有裂解婴儿红细胞的小瓶在37°C水浴中快速解冻。
将解冻的细胞转移至含有10毫升37摄氏度预热的完全RPMI培养基的15毫升锥形管中。在室温下以400 × g离心5分钟,弃去上清液。用3毫升完全RPMI培养基重悬细胞沉淀,并计数细胞总数。
如果样本浓度过高无法计数,则需进行稀释。计数细胞后,重复离心步骤,并将细胞重新悬浮于完全RPMI培养基中,调整浓度至每毫升含一百万个细胞。将含有十万个细胞的100微升悬液转移至96孔V型底板的每个孔中。
将培养板在4°C、764 ×g条件下离心2分钟。弃去上清液。接下来,除未染色对照外,向所有样品中加入100 µL活/死染料原液(用含FC阻断剂和单核细胞阻断剂的PBS按1:2,000稀释),其中FC阻断剂和单核细胞阻断剂均按1:100稀释。
将样品在 4 摄氏度下孵育 15 分钟。洗涤细胞时,加入 100 µL PBS。在 4 摄氏度下以 764 ×g 离心 2 分钟,小心弃去上清液。
除未染色对照外,向所有样本中加入100微升表面抗体混合液,该混合液用荧光激活细胞分选(FACS)缓冲液按1:200比例稀释。在4摄氏度下孵育30分钟。然后用100微升FACS缓冲液洗涤细胞,离心并弃去上清液。
向每个样本中加入100 µL 4%多聚甲醛固定细胞,在室温避光条件下孵育15分钟,然后再次洗涤细胞,并重悬于200 µL FACS缓冲液中。制备UltraComp补偿微珠作为单色对照。
使用与样本相同的步骤对单色对照微球进行染色,如果样本经过固定,则也需对微球进行固定。同样地,制备荧光减一(fluorescence minus one,FMO)对照。在常规或光谱流式细胞仪上检测样本、单色对照、未染色对照以及荧光减一对照。
打开 FlowJo 软件,选择需要分析的样本。使用相应的同型对照和荧光减一对照(FMO)设置门控。通过 FSC 与 SSC 点图对白细胞设门,以排除碎片,并根据细胞大小和颗粒度选择目标细胞。
使用FSC-A与FSC-H排除双联体。利用活细胞染料设门以排除死细胞。从活的单细胞中,分为CD33阴性淋巴细胞和CD33阳性髓系细胞。
在 CD33 阳性细胞中,鉴定 CD14 阳性单核细胞。随后在 CD33 阳性细胞中,鉴定 CD14 阴性、CD11C 阳性树突状细胞。接着,在 CD33 阴性淋巴细胞中,鉴定 CD3 阳性 T 细胞以及 CD3 阴性、CD56 阳性自然杀伤细胞。
在CD3阳性T细胞中,鉴定CD8阳性与CD4阳性亚群,并鉴定CD3阴性、CD56阴性、CD19阳性B细胞。首先,将一管冻存的红细胞裂解后的细胞置于37°C水浴中解冻。将细胞悬液转移至含有10 mL T细胞培养基的15 mL圆锥形离心管中,在4°C条件下以430 ×g离心5分钟。
弃去上清液。用一毫升磷酸盐缓冲液重悬细胞沉淀后,向样品中再加入九毫升磷酸盐缓冲液。在4 °C条件下以430 ×g离心五分钟,弃去上清液。
使用台盼蓝染色排除法计数细胞并评估细胞活力。如果细胞活力低于70%,则按照以下步骤使用死细胞去除试剂盒。首先,通过将20倍浓度的结合缓冲液储存液用无菌双蒸水稀释,制备1倍浓度的结合缓冲液。
每 10^7 个总细胞,用 100 微升去死细胞去除微珠重悬细胞沉淀。充分混匀后,在室温下孵育 15 分钟。将磁性分离柱放入合适的磁力架中,并配以收集管。
然后用500微升1×结合缓冲液冲洗柱子以平衡。用1×结合缓冲液将细胞悬液体积调至500微升。更换收集管后,将细胞悬液加入柱中,并用新的1.7毫升微量离心管收集穿流液。
接下来,用 500 微升结合缓冲液将柱子洗涤两次,每次的流穿液均收集至同一微量离心管中。将洗脱液在 300 ×g 离心 10 分钟,弃去上清液。使用台盼蓝排斥法再次对细胞进行计数并评估其活力。
取20,000个活细胞分装至新的1.7毫升微量离心管中。随后以300 g离心10分钟,并弃去上清液。用40微升含0.04% BSA的PBS重悬细胞。
最后,将含有细胞的离心管置于冰上,并立即送至基因组核心实验室进行文库构建和测序。以细胞捕获器(cell ranger)输出格式收集测序结果。对早产儿和对照组的干血斑样本进行了处理。
同时对92种免疫相关蛋白的标准化蛋白表达水平进行了定量分析。与足月脐带血相比,早产儿在两个月龄时外周血中淋巴细胞活化基因3和信号阈值调节跨膜衔接蛋白1的表达水平显著升高。采用全面的设门策略,从红细胞裂解后的白细胞样本中鉴定白细胞群体。
在T细胞群体中,区分出CD4阳性与CD8阳性亚群。经过筛选后,在单细胞核糖核酸测序数据集中捕获并分析了超过120,000个细胞。通过降维及聚类分析,鉴定了14个不同的细胞簇。
根据差异表达基因和已知的细胞标志物对细胞簇进行注释。14个细胞簇中的12个对应于免疫细胞谱系,包括T细胞、自然杀伤细胞、B细胞、髓系细胞和中性粒细胞。堆叠柱状图展示了在出生后一周、一个月和两个月时各细胞簇中细胞的相对比例。
本研究能够从有限体积的血液样本中纵向测量细胞、转录组、蛋白质组及功能性的免疫特征。未来的研究可利用这些方法定义健康的免疫轨迹,并揭示与疾病相关的生命早期免疫应答失调现象。
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本文介绍了利用极小血量对新生儿进行高维免疫谱型分析的优化方案。通过整合流式细胞术、蛋白质组学和单细胞RNA测序等先进技术,该研究能够对新生儿免疫系统的发育进行全面的纵向分析,即使是对极低出生体重或早产婴儿也同样适用。
利用极少量新生儿血液样本进行整合性的单细胞与多组学分析,可前所未有地揭示生命早期免疫系统的发育过程,克服儿科研究中关键的样本量限制。该方法支持对免疫发育轨迹进行高分辨率描绘,有助于在人类免疫系统发育的最早阶段开展靶点验证和机制性风险评估。这些实验方案可实现纵向、定量的免疫监测,直接为儿科及新生儿治疗项目的转化研究决策提供依据。
这种整合分析方法通过利用有限的新生儿样本实现全面的免疫分析,将早期发现、筛选和转化研究连接起来。