31 июля 2011 г.
Стабильный Стандарты Изотопные и Capture Анти-пептидов Антитела (SISCAPA) пары близость обогащение пептиды со стабильной изотопного разбавления масс-спектрометрии (MRM-MS) для обеспечения количественного определения пептидов в качестве суррогатов для соответствующих белков. Здесь мы опишем протокол с использованием магнитных частиц в частично автоматизированные формате.
Общая цель следующей процедуры заключается в выделении и количественном определении пептидов в сложной смеси, которые выступают в качестве суррогатов соответствующих белков. Сначала крупные белки в составе смеси переваривают до компонентных пептидов с использованием такого фермента, как трипсин. Затем целевые пептидные аналиты и добавленный внутренний стандарт, меченный стабильными изотопами, обогащают с помощью антипептидных антител, иммобилизованных на магнитных частицах с белком G, после проведения изоляции.
Целевые пептиды элюируют с магнитных частиц и анализируют методом масс-спектрометрии для количественного определения относительно внутреннего стандарта. Основным преимуществом данного метода перед существующими, такими как традиционный иммуноанализ, является то, что он быстрее и экономически эффективнее при создании большого количества анализов. Метод характеризуется высокой эффективностью и легко поддается мультиплексированию, что и будет продемонстрировано в описанной процедуре.
Лаборант взял 10 µL плазмы крови на лед. Перенесите образец в планшет с глубокими лунками объемом 1000 µL и накройте парафиленовой пленкой для денатурации белков. Добавьте по 20 µL свежего 9 M раствора мочевины и 30 mM DTT в каждый образец и инкубируйте в течение 30 минут при 37 °C. Добавьте по 3 µL свежего 500 mM иодацетамида в каждый образец и инкубируйте в течение 30 минут в темноте при комнатной температуре. Теперь разбавьте мочевину до 0,6 M с помощью 100 mM Tris pH 8 и добавьте 10 µL стокового раствора трипсина в концентрации 1 µg/µL для достижения соотношения фермента к субстрату 1:50.
После инкубации реакционной смеси при 37 °C в течение ночи с добавлением 3 µL чистой муравьиной кислоты до конечной концентрации 1% приступайте к добавлению стандарта с изотопно-мечеными соединениями или нескольких таких стандартов. При проведении мультиплексного анализа тщательно промойте планшет с картриджами Oasis 500 µL 0,1% муравьиной кислоты в 80% ацетонитриле, слив фильтрат. Затем уравновесьте планшет с картриджами, добавив 500 µL 0,1% муравьиной кислоты в воде, и слейте фильтрат.
Загрузите образцы гидролизата на картриджную пластину и отрегулируйте вакуум так, чтобы поток был очень медленным. Трижды промойте образцы 500 µL 0,1% муравьиной кислоты в воде и удалите фильтрат. Элюируйте пептиды дважды, используя 500 µL 0,1% муравьиной кислоты в 80% ацетонитриле, затем лиофилизируйте или высушите элюат в вакуум-центрифуге досуха и восстановите высушенные пептиды в 50 µL PBS с добавлением 0,03% Chaps. Перенесите образцы в стандартный 96-луночный планшет Kingfisher; добавьте 1 µg антитела и 1,5 µL магнитных частиц, покрытых белком G, на каждую мишень. Перед добавлением перемешайте частицы на вортексе.
Чтобы обеспечить равномерную суспензию бусин, накройте планшет фольгой и инкубируйте его в течение ночи в ротаторе. Центрифугируйте планшет при 400 RPM в течение 10 секунд, чтобы удалить жидкость с поверхности фольги.
Снимите фольгированную крышку. Манипуляции с образцами проводятся на автоматизированной платформе Kingfisher. Дважды промойте гранулы 200 µL PBS с добавлением 0,03% CHAPS, а затем один раз 200 µL разведенного в 10 раз раствора PBS с 0,03% CHAPS. Теперь элюируйте пептиды, используя 25 µL 5% уксусной кислоты с добавлением 0,03% CHAPS.
Поместите элюционную планшетку на магнит и перенесите элюат в 96-луночный планшет, стараясь не переносить остатки бусин. Накройте планшет герметичной крышкой и передайте этот планшет с элюатом в тройной или четверной масс-спектрометр для анализа. Метод MRM разрабатывается путем получения тандемного масс-спектра интересующего пептида с последующим выбором и оптимизацией наиболее подходящих фрагментных ионов перехода.
Обычно для MRM-анализа используется ловушка C 18 и аналитическая колонка с двумя подвижными фазами. Введите 10 µL образца и проведите элюирование с использованием линейного градиента. Интегрируйте площади пиков легких и тяжелых пептидов, а затем рассчитайте отношение площадей пиков немеченого и меченого пептидов для каждого образца.
Легкие и тяжелые пептиды элюируются одновременно, и для каждого пептида можно отслеживать несколько переходов. Для подтверждения идентичности площадь пика эндогенного пептида измеряется относительно площади внутреннего стандарта, что позволяет получить количественную оценку целевого пептида. После просмотра этого видео вы должны получить четкое представление о том, как реализовать этот метод в вашей лаборатории. Его можно использовать для количественного определения любого интересующего белка, что делает его подходящим для широкого спектра применений в биологических исследованиях.
В данной статье описывается метод использования стандартов стабильных изотопов и захвата антителами к пептидам (SISCAPA), который сочетает в себе аффинное обогащение пептидов с масс-спектрометрией с разбавлением стабильными изотопами для количественного определения пептидов. В протоколе используются магнитные частицы в частично автоматизированном формате для повышения эффективности.
Количественное определение белков остается критическим узким местом в валидации мишеней и поиске биомаркеров, поскольку традиционные иммуноанализы сталкиваются с ограничениями по стоимости, времени выполнения и интерференции. Метод SISCAPA представляет собой масштабируемую и мультиплексную альтернативу, которая повышает прогностическую достоверность на ранних этапах поиска, обеспечивая стехиометрическое, не зависящее от антител количественное определение протеотипических пептидов. Это способствует принятию обоснованных по рискам решений по портфелю проектов и обеспечивает трансляционную преемственность от гипотезы к доклиническим моделям.
Метод SISCAPA интегрируется в процесс поиска лекарственных средств — от валидации мишени до идентификации ведущих соединений, обеспечивая количественное измерение белков в качестве основы для разработки анализов и проведения скрининговых кампаний.