2024年8月9日
本文介绍了热位移分析法,这是一种高通量、基于荧光的技术,用于研究小分子与目标蛋白质的结合。
我们的目标是研究功能未知蛋白质的生物化学活性。辅因子的结合不仅对某些蛋白质的活性至关重要,还可能改变其热稳定性。这一现象的一个实际应用在于利用蛋白质熔点温度所测得的热稳定性变化,来分析配体结合情况。
热位移分析是一种多功能工具,可用于研究蛋白质与潜在辅因子或药物的相互作用,并用于确定适合晶体学研究的稳定条件。与其他筛选方法相比,该方法具有设置相对简单、通量高的优势,可使用96孔或384孔板进行。硒蛋白O(Selenoprotein O,简称SelO)是一种在进化上保守的假激酶,能够将腺苷一磷酸从ATP转移至蛋白质底物,这一过程称为AMP化修饰,属于翻译后修饰的一种。在本实验方案中,我们利用热位移分析(TSA)来研究SelO对核苷酸和金属离子的结合特性。
首先,使用热迁移分析(TSA)缓冲液配制 SelO 蛋白溶液。将蛋白、小分子化合物和 SYPRO Orange 染料分别加入 384 孔板的相应孔中。用光学透明的粘性封膜覆盖孔板,并在离心机中以 1000g 离心一分钟,短暂离心收集液体。
然后将反应板放入实时荧光定量PCR仪中,设置程序为:20摄氏度保持2分钟,随后每分钟升高0.5摄氏度,直至95摄氏度。从实时荧光定量PCR仪导出相对于温度的相对荧光单位(RFU)数据。使用选定的软件,提取每条熔解曲线中荧光强度达到最高值之前的数据点并进行绘图。
通过Boltzmann S型拟合数据确定熔解温度(Tm)。热变性曲线显示,在存在ATP和镁离子的情况下,大肠杆菌SelO的热稳定性提高了4摄氏度,而在ATP和锰离子存在时则提高了12摄氏度。然而,在与UTP孵育时,热稳定性未发生改变,表明大肠杆菌SelO可能无法与UTP发生可检测的结合。无蛋白以及无染料的对照组荧光信号较低,且不随温度升高而变化。
本文介绍了热迁移实验(TSA),这是一种基于荧光的高通量技术,用于研究小分子与蛋白质的结合。TSA 特别适用于分析配体结合以及确定晶体学所需的稳定条件。
热移位分析(TSA)能够快速、高通量地评估配体结合与蛋白质稳定性,直接支持生物制药研发中早期靶点验证和机制性风险排除。通过定量分析硒蛋白O与底物及辅因子的相互作用,TSA为功能注释以及为后续结构研究确定稳定条件提供了依据。该方法在发现流程的关键转折点上增强了预测的可信度,尤其适用于此前功能未知的蛋白质。
TSA 位于早期发现与先导物识别的交汇点,能够实现以假设为驱动的靶点验证,并支持下游的检测开发和结构生物学工作流程。